Как берут у собак кровь для переливания. Переливание крови собакам и кошкам

Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН
ООО «Биоконтроль»
Козловская Н.Г.

  • 1628 г. — Гарвей — закон кровообращения
  • 1666 г. — Лоуэр — переливание крови от собаки к собаке
  • 1666 г. — Кок и Кинг — несовместимость крови разных видов
  • 1821 г. Дюма и Прево — применение дефибринированной крови
  • 1914 г. — 1915 г. — Луисон — открытие цитрата Na
  • 1916 г. — консервирование крови

В 1926 г. в Москве был организован первый в мире Институт переливания крови (ныне Гематологический Научный Центр АМН РФ). Идеологом его создания и первым директором был Александр Александрович Богданов (Малиновский, 1873-1928), врач, философ, политик, писатель и мн.др. В Институте изучались достоинства и недостатки гемотрансфузии, пропагандировалось обменное переливание крови как метод не только лечения многих болезней.

К 1875 г. Леонард Ландуа (L.Landois) нашел в литературе несколько сот случаев переливания крови между животными, между людьми и от животных людям. В качестве доноров крови использовались главным образом собаки и овцы (ягнята, бараны). Переливаемая здоровым и больным людям кровь животных вызывала многочисленные, в том числе смертельные, осложнения, и как раз в те времена возникла дошедшая до нашего времени шутка:

Для переливания крови нужно не менее 3 баранов: один, из которого берут кровь, другой — которому её переливают, и третий — который всё это делает.

Физиологические задачи крови заключаются в:

  • дыхательной
  • защитной
  • обменной
  • гемостатической функции.

Переливание компонентов крови — это лечебный метод.

Показания для гемотрансфузии:

  • острая, хроническая кровопотеря
  • гематологические заболевания
  • невостанавливающая анемия
  • коагулопатии

Клинические признаки кровопотери/анемии:

  • уменьшение ОЦК < 30%
  • гематокрит < 25%
  • гемоглобин < 80 г/л
  • непрерывное кровотечение или гемолиз
  • СНК > 2 сек.
  • бледные слизистые
  • тахикардия

Определяют абсолютные показания и относительные показания для гемотрансфузии. При абсолютных показаниях без гемотрансфузий больной может погибнуть, например, при массивной кровопотере, шоке, терминальных состояниях. Противопоказания к переливанию в данном случае практически отсутствуют.
При относительных показаниях больной может поправиться и без гемотрансфузий. Она является лишь частью комплексного лечения. В данном случае следует тщательно учитывать противопоказания к переливанию крови.

В зависимости от индивидуальных показаний применяют разные компоненты крови.

Введение закрытых систем для взятия крови в 1960 г. позволило разделять цельную кровь на компоненты без риска их повреждения. Это в свою очередь дало возможность изолированно переливать компоненты крови в зависимости от конкретной ситуации.

Цельная кровь.

При острой необходимости в критических ситуациях. Её рассматривают как замещающую жидкость при сильных кровотечениях. Длительное хранение цельной крови приводит к снижению активности ряда факторов свёртывания, тромбоцитов и гранулоцитов (жизнеспособность 24-48 ч).

Эритроцитарная масса.

Эритроцитную массу используют в качестве источника гемоглобина, а не как средство восполнения объёма циркулирующей крови. Для восстановления ОЦК совмещают с кристаллоидами или коллоидами по ситуации.

Выделяют следующие показания к переливанию переносчиков газов крови:

  1. острая анемия вследствие массивной кровопотери 25 - 30% ОЦК, сопровождающаяся снижением уровня гемоглобина ниже 80 г/л, гематокрита ниже 25 % и возникновением циркуляторных нарушений;
  2. хроническая анемия; в данном случае гемотрансфузии должны расцениваться как «последний рубеж» терапии и проводиться по самым строгим показаниям (например, при лейкозах).

Показаниями к переливанию свежезамороженной плазмы являются:

  1. острый синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови (ДВС-синдром);
  2. острая массивная кровопотеря более 30 % ОЦК с развитием геморрагического шока и ДВС-синдрома;
  3. коагулопатии (нарушения свертывания крови), обусловленные дефицитом плазменных физиологических антикоагулянтов;
  4. передозировки антикоагулянтов непрямого действия;
  5. дефицит факторов свертывания крови в результате снижения их продукции (заболевания печени, острые гепатиты);
  6. кровотечения ЖКТ

Противопоказания к переливанию крови. При абсолютных показаниях противопоказаниями являются тяжелые поражения сердечно-сосудистой системы с недостаточностью кровообращения II и III стадии, выраженный атеросклероз, тромбоэмболическая болезнь, кровоизлияние в мозг, отек легких, бронхиальная астма.

К противопоказаниям при относительных показаниях относятся такие состояния, при которых велика вероятность неблагоприятных изменений в организме реципиента при введении донорской крови - перегрузка объемом, аллергические реакции, повышение свертываемости крови, тромбоэмболические осложнения и др.

Гемотрансфузия – это переливание больным животным либо цельной крови, либо компонентов, либо белковых препаратов плазмы. Это довольно серьезная процедура.


В 80% случаев переливание крови собакам вызвано анемией, а в 20% - геморрагическим шоком.


Переливание крови порой спасает жизнь собаке и играет решающую роль в преодолении критического состояния.

Цели переливания крови собакам

  1. Замещение. Эритроциты, полученные от донора, остаются в крови реципиента на протяжении 1 – 4 месяцев, это повышает уровень кислорода в тканях.
  2. Стимуляция – воздействие на разные системы и органы собаки.
  3. Улучшение гемодинамики. Улучшение работы сердечно-сосудистой системы, повышение минутного объема сердца и т.п.
  4. Гемостатическая цель. Стимулируется гомеостаз, наблюдается умеренная гипероагуляция.

Показания для переливания крови собакам

  1. Выявленное острое кровотечение, указанием на которое являются бледные слизистые, слабый и частый пульс, холодные лапы.
  2. Хронические кровопотери и нестабильная гемодинамика, указывающие на недоставку кислорода в ткани в достаточном количестве.
  3. Невосстанавливающаяся анемия различной этиологии.
  4. Наследственная или приобретенная коагулопатия, тромбоцитопения, лейкопения, гипопротеинемия.

Материал для переливания крови собакам

Легче всего получить материал из цельной свежей крови. Поэтому она широко применяется в ветеринарии.


Эритроциты консервируют, хранят охлажденными (температура 3 – 6 0 С) и применяют в течение 30 дней либо до момента обесцвечивания эритроцитов.


Эритромасса необходима для пополнения запаса эритроцитов (при хронической анемии) либо при риске перегрузки дополнительным объемом жидкости. Также она используется при острой кровопотере (в сочетании с кристаллоидами).


Плазма необходима для восстановления факторов свертывания, в т.ч. нестойких компонентов. Материал хранится при температуре -40 0 С в течение 1 года. Перед переливанием ее нагревают до +30 – 37 0 С, а затем как можно быстрее вводят в организм собаки.

Способы введения

Как правило, кровь и ее компоненты вводятся внутривенно.


Если ввести кровь в вену невозможно (гнойники, сильные отеки), используется внутрикостная инфузия.

Риски и осложнения при переливании крови собакам

Острые осложнения связаны с нарушением кислотно-щелочного состава крови, погрешностями в технике переливания, нарушением гемодинамики. Замедленные осложнения могут быть связаны с переливанием перегретой, гемолизированной или инфицированной крови: посттрасфузионный (гемолитический) шок, цитратный (анафилактический) шок, инфекционные заболевания.


Неиммунологические реакции (острая форма) проявляются как лихорадка. Причина – реакция меду антигеном и антителом, вовлекающей тромбоциты, гранулоциты или лимфоциты, или бактериальной контаминации крови. Иногда наблюдается аллергическая реакция (крапивницы с зудом и сыпью). О повышенной нагрузке на систему кровообращения говорит рвота, тахикардия, повышенная возбудимость, кашель, одышка или цианоз.


Другие факторы риска:

  • отек легких
  • трасмиссивная инфекция
  • лихорадка
  • посттрансфузионная циркуляторная перегрузка
  • гиперволемия
  • острые постгемотрансфузиальные реакции
  • синдром полиорганной недостаточности и др.

Могут поражаться легкие, печень, эндокринные железы и другие системы и органы.


Перегрузка может привести к острому расширению и остановке сердца.


Переливание может вызывать иммуномодулирующий эффект и увеличить риск развития нозокомиальных инфекций, острого повреждения легких, аутоиммунных болезней.


Самое тяжелое осложнение – анафилактический шок. Если проявляются даже незначительные признаки, переливание следует прекратить как можно быстрее.

Переливание крови собакам как методика лечения

Данная процедура стала набирать все больший вес за последние годы. Ее польза многократно подтверждалась в рамках лечения ряда гематологических болезней. Ветеринары могли почти не придавать значения несовместимости групп крови у реципиента и донора благодаря простоте системы групп крови у собак и низкому содержанию естественно возникающих изоантител.


Еще одна проблема, связанная с выбором донора – потенциальная опасность заразиться инфекционным заболеванием.


Этическая сторона связана с ограничениями количества забираемой крови у собаки без ущерба для здоровья (до 10 мл/кг). Очередной забор крови осуществляется не ранее чем через 45 – 60 дней.

Кто может стать донором

Один раз собаке можно перелить кровь любой группы. Но если требуется последующее переливание, группа крови должна совпадать. Резус-отрицательные собаки могут получать лишь резус-отрицательную кровь. Любую кровь могут получать резус-положительные собаки.

Иногда требуется срочное переливание крови. В этом случае либо используют «случайного» донора (здоровую собаку, оказавшуюся в клинике – для прививки, стрижки когтей и т.п.) или питомца одного из врачей.


Животному должно быть от 1,5 до 8 лет, оно должно быть абсолютно здорово.


В доноры берут спокойных, покладистых собак.


Масса тела собаки-донора (мышечная масса) должна быть более 25 кг.


Идеальная группа крови – DEA 1.1. отрицательная.


Если донор – сука, она должна быть нерожавшей.


Донор не должен был выезжать из местного региона.

Мониторинг состояния собаки при переливании крови

Каждые 15 – 30 минут в ходе переливания и через 1, 12, 24 часа после процедуры оцениваются следующие параметры:

  1. Поведение.
  2. Качество и интенсивность пульса.
  3. Ректальная температура.
  4. Характер и интенсивность дыхания.
  5. Цвет мочи и плазмы.
  6. Цвет слизистых оболочек, время наполнения капилляров.
  7. Протромбиновое время и гематокрит контролируются до, сразу после завершения и спустя 12 и 24 часа после переливания.


Группы крови собак

Есть мнение, что у собак 7 групп крови. Это не совсем так. Перечень A – G – это системы групп крови, вернее, лишь 1 из вариантов 1961 года «выпуска». С тех пор предпринималось еще множество попыток упорядочить данные, и в 1976 г. разработали номенклатуру DEA, которая в настоящее время общепринята в США. По данной номенклатуре системы крови можно обозначить как DEA 1.1, DEA 1.2, DEA 3, DEA 4, DEA 5, DEA 7 и DEA 8.


Система DEA 1 – наиболее клинически актуальная. В этой системе 3 пары ген-белок и 4 возможных фенотипа: DEA 1.1., 1.2, 1.3 и 0. Одной собаке присущ только 1 фенотип. Но у собак нет антител к антигенам другой группы, поэтому собаке, которой никогда раньше кровь не переливали, можно перелить кровь без совместимости по DEA 1.1, и переливание будет эффективным. Но если необходимо повторное переливание, возможны сложности.


При переливании DEA 1 отрицательному реципиенту (фенотип 0) крови положительного донора DEA 1 (любой фенотип кроме 0) организм получателя через 7 – 10 дней способен выработать антитела к антигену DEA 1, которые разрушают любые эритроциты, имеющие этот антиген на себе. В дальнейшем такой реципиент будет требовать только переливаний DEA 1-отрицательной крови, иначе донорские эритроциты вместо стандартных 3 недель проживут в организме получателя, в лучшем случае, лишь несколько часов, а то и несколько минут, что сводит к нулю эффект переливания, и может даже усугубить ситуацию. При этом положительному донору DEA 1 можно переливать кровь DEA 1-отрицательного, однако с условием, что этот донор никогда не был получателем.


Антиген DEA 1 представлен рядом вариантов: DEA 1.1, DEA 1.2., DEA 1.3.


При иммунизации DEA 1-отрицательной собаки кровью DEA 1.1. антитела, вырабатываемые ею, мгновенно разрушают эритроциты с DEA 1.1. и вызывают острую гемолитическую реакцию, чреватую тяжелыми осложнениями. При этом эритроциты с DEA 1.2 и 1.3 эти антитела будут агглютинировать, но не разрушать (хотя для пациента это тоже плохо).


Если говорить о системе DEA 3, собака может быть либо DEA 3-положительной, либо отрицательной. Переливание полоительной крови DEA 3 животному с соответственными антигрупповыми антителами (приобретенными или своими) разрушает эритроциты донора и может вызывать острые трансфузионные реакции в ближайшие 5 дней.


Система DEA 4 также имеет фенотипы + и -. Без предварительной иммунизации у DEA 4-отрицательных собак антител к DEA 4 нет. Повторное переливание DEA 4-отрицательному реципиенту даже при наличии антител к DEA 4 не вызывает гемолитической реакции. Однако известен случай гемолиза у собаки, которой переливали несовместимую кровь несколько раз подряд.


Система DEA 5 также бывает положительной и отрицательной. 10% DEA 5-отрицательных животных обладают антителами к DEA 5. Переливание крови сенсибилизированному пациенту вызывает гемолитическую реакцию и гибель эритроцитов донора в течение трех суток.


Система DEA 6 имеет 2 фенотипа, + и -. В норме отсутствуют антитела к этому антигену. Переливание крови сенсибилизированному реципиенту приводит к умеренно выраженной трансфузионной реакции и умеренному снижению продолжительности жизни донорских эритроцитов.


Система DEA 7 имеет 3 фенотипа: отрицательный, 0 и Tr. Антитела к Tr и 0 есть у 25% DEA-отрицательных животных, но у них нет выраженного гемолитического эффекта. Но при последующей сенсибилизации нарабатываются другие, которые способны разложить донорскую кровь меньше чем за 3 суток.


Система DEA 8 толком не изучена.


Кроме вышеназванных, существуют другие системы, которые не включены в DEA, так как были открыты недавно, и ряд систем, специфичных для определенных пород (например, восточных собак – шибу-ина и т.п.)


Существуют диагностические наборы для определения отсутствия или наличия антигенов DEA 1.1., 1.2, 3, 4, 5 и 7, однако они довольно дороги. Как правило, в реальности, особенно в небольших городах, нет готовых доноров, и совместимость определяют «на стекле». Однако это позволяет исключить лишь вероятность немедленной трансфузионной реакции, так как взаимодействие эритроцитов отслеживается лишь до высыхания капли, т.е. несколько минут.

Страшный кошмар каждого владельца собаки связан с теми опасными для жизни ситуациями, в которых может оказаться его четвероногий любимец. А таковых на практике случается немало. Что делать, если животное срочно нуждается в переливании крови? Как спаси жизнь преданного друга? Обратитесь в ветеринарную клинику «АВЕРС»! Мы располагаем банком крови собак, который обязательно выручит в кризисной ситуации.

Случаи, когда требуется гемотрансфузия

Донорство собак - ветеринарная практика, которая только начала набирать обороты в нашей стране. В Москве процедуры по забору крови, ее хранению и переливанию от одного животного другому проводятся с наступлением нового тысячелетия. Однако за этот относительно короткий промежуток времени собаки-доноры успели спасти жизни сотням своих собратьев.

В результате гемотрансфузии организм лохматого пациента лучше справляется с заболеваниями, работа сердца усиливается, совершенствуется доставка кислорода к тканям, возрастает клеточный и гуморальный иммунитет, улучшается свертываемость крови.

Особенности «собачьего донорства»

В отличие от человеческого донорства, переливание крови от собаки к собаке имеет свои нюансы. В зависимости от классификации, ветеринары определяют 7-11 групп крови. Однако здесь начинается самое интересное: в первый раз животному можно влить кровь от любого донора, без определения ее группы и резуса. Это связано с отсутствием у собак антител, разрушающих чужие эритроциты и отторгающих донорскую кровь. Зато при повторном переливании придется провести исследования на реакцию совместимости. Однако подобные ситуации, как показывает практика, случаются крайне редко.

Портрет собаки-донора

Итак, кто может стать донором крови?

  • собаки любых крупных пород (доги, овчарки, сенбернары, ризеншнауцеры, лабрадоры), а также метисы;
  • возрастом 2-8 лет;
  • весом от 20кг;
  • имеющие все профилактические прививки (при этом необходимо предоставить документы, свидетельствующие о проведенной вакцинации);
  • без каких-либо признаков острых или хронических заболеваний на момент сдачи крови;
  • не беременные и не кормящие животные.

Все прочие лабораторные исследования материала проводят уже наши специалисты. Они включают биохимию крови, общий клинический анализ и антигены вирусов методом ПЦР.

Как показывает практика, чаще всего донорами крови становятся животные, которые когда-либо ранее переживали тяжелые ситуации, несущие угрозы жизни. Более того, нередки случаи, когда четвероногий любимец становится донором на постоянной основе. Правила при этом следующие:

  • сдавать кровь можно не чаще, чем раз в 40 дней;
  • единоразово можно взять не более 10% от общего объема крови;
  • не рекомендуется сдавать кровь на полный желудок, а также перед какими-либо существенными нагрузками. Последний прием пищи должен состояться за 8-11 часов до сдачи крови.

Желательно, чтобы собака-донор отличалась дружелюбным настроением - это только облегчит процесс сдачи крови. Если животное по всем параметрам подходит для того, чтобы стать донором, из ее яремной вены, проходящей в области шеи, делают забор спасительной жидкости. На самом деле процедура эта причиняет животному минимум неудобств и болезненных ощущений, а длится не долее 10 минут. Напоминанием о ней остается лишь небольшой выстриженный участок кожи.

Сразу после этого животное ненадолго остается в клинике, чтобы набраться сил. Для этого его угощают лакомствами и в обязательном порядке дают воду - эти меры способствуют лучшему кроветворению. Впоследствии владелец должен уделить пристальное внимание рациону своего любимца. К примеру, его можно обогатить куриной либо говяжьей печенкой.

Полученный в результате забора материал в течение пары часов разделяют на компоненты, которые используются в дальнейшем. Это эритроцитарная масса и свежезамороженная плазма. Лишь в редких случаях, когда требуется цельная кровь для переливания в качестве замещающей жидкости при сильной кровопотере, ее не разделяют на составляющие.

Переливание по всем правилам

Другая сторона медали - переливание цельной крови или ее компонентов пострадавшему животному. Вся процедура может занимать несколько часов и проводится под наблюдением ветврача. Во время нее, помимо крови, в организм собаки могут вводиться определенные медикаментозные средства, используемые для более эффективного лечения.

После процедуры ветеринарный врач контролирует основные физиологические показатели, включая температуру, общее состояние и проч. Через сутки у животного, прошедшего через гемотрансфузию, берется общий анализ мочи и крови. «АВЕРС»: всегда рядом!

Ветеринары нашей клиники обладают всеми необходимыми знаниями и навыками, а также техническим оборудованием, требующимися для взятия и переливания крови. Процедуры забора и гемотрансфузии проходят в стерильных условиях, что исключает возможность занесения в организм животного какой-либо инфекции. Мы обращаемся с животными с максимальной внимательностью и осторожностью, чтобы не причинить им дискомфорта.

Если Ваш питомец нуждается в помощи; либо, напротив, Вы хотите помочь животным, оказавшимся в тяжелой ситуации - обращайтесь в ветеринарную клинику «АВЕРС»! Мы работаем для того, чтобы домашние любимцы были здоровы, а их владельцы - счастливы.

Переливание крови у собак

В комплексе лечения переливание крови имеет очень важное значение. В клинической практике гемотрансфузии применяют с заместительной целью (перелитые эритроциты находятся в крови реципиента 30-120 дней), стимулирующей целью (действует на различные функции животного организма), с целью улучшения гемодинамики (увеличивается ОЦК, усиливается работа сердца, повышается минутный объем сердца и т.д.), гемостатической целью (переливание крови оказывает стимулирующее действие на систему гемостаза реципиента, вызывая умеренную гиперкоагуляцию, обусловленную увеличением тромбопластической и снижением антикоагулянтной функции крови) (О.К. Гаврилов, 1982).

У собак имеется семь групп крови, определяемых по антигенной принадлежности: А, В, С, D, Е, F и G. Фактор А у животных имеет такое же значение, как и резус-фактор у людей. Этот фактор имеется примерно у 60-65% животных. Повторное переливание крови животному, у которого этого фактора нет, может привести к тяжелым гемотрансфузиологическим последствиям – гемолизу крови и гибели животного.

Первое переливание крови, как правило, не вызывает тяжелых осложнений из-за слабо выраженных антигенных свойств факторов В-G. Однако в некоторых случаях могут наблюдаться аллергические реакции в виде крапивницы, зуда и т.п., которые могут развиться сразу (ранняя реакция) и спустя несколько дней (поздняя реакция). Во избежание этих осложнений необходимо проводить пробы на групповую и индивидуальную совместимость. Для этого необходимо к 1 мл сыворотки реципиента добавить 0,1 мл эритроцитов донора. Реакция производится на стекле при температуре 22-250С. учет осуществляют через 5 минут. При отсутствии агглютинации можно приступать к биологической пробе на индивидуальную совместимость.

Биологическая проба на индивидуальную совместимость проводится путем струйного переливания 10-15 мл крови в течение 3 минут крупным породам собак и 3-5 мл – мелким. Проба проводится трехкратно. При этом у животного, по возможности, измеряется артериальное давление, частота пульса, число дыхательных движений до переливания и через 10-15 минут после струйного введения крови. Беспокойство животного, одышка, тахикардия или аритмия, падение давления, рвота, появление болевых ощущений свидетельствуют о несовместимости переливаемой крови.

При переливании крови следует учитывать, что наиболее подходящей для гемотрансфузии является свежая донорская кровь. Заготовленная заранее кровь уже к 10 дню имеет кислую реакцию (рН до 6,0) и содержит калий в высоких концентрациях (до 8 ммоль/л), что может вызвать аритмию и даже остановку сердца. При переливании заранее заготовленной крови ее необходимо подогревать на водяной бане до температуры 370С, т.к. холодная кровь вызывает гипотермию миокарда, спазм периферических сосудов и ацидоз, легко уходит в кровяное депо. На каждые 200-250 мл цитратной крови вводится 5 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, 50 мл 40%-ного раствора глюкозы с 4 ед. инсулина и 20-30 мл 3%-го раствора соды (с целью нейтрализации гиперкалиемии и коррекции ацидоза) (А.А. Бунятян, 1982).



Заготавливая кровь, используют глюгицир (50 мл на 200 мл крови), или следующий состав:

Natrii citrici 2,2%

Ac. citrici 0,8%

Aq. destillatae 94,55%

Такой состав используется в количестве 15 мл на 100 мл крови (М. Закиевич, 1994). Кровь с консервантом можно хранить 21 день при температуре 40С.

Забор крови от животного осуществляется путем венепункции толстой иглой и сливанием ее во флакон с приготовленным консервантом. Для предупреждения коагуляции крови в системе, последнюю необходимо предварительно промыть раствором гепарина или глюгициром, или ввести гепарин донору из расчета 100-200 ед. на 1 кг массы тела. Животному-донору предварительно вводят седативные препараты. Система для взятия крови не должна быть длиннее 25-30 см, т.к. кровь собак склонна к гиперкоагуляции и при большей длине трубки сворачивается в системе. Сосуд для сбора крови необходимо постоянно покачивать с целью перемешивания крови и консерванта.

Без ущерба для здоровья животного можно забирать кровь из расчета 10 мл/кг. Переливают кровь капельно с темпом 40-60 кап/мин из расчета 5-18 мл/кг в час. Повторный забор крови можно производить через 1,5-2 месяца.

При необходимости можно осуществлять заготовку трупной крови (от животных, погибших в результате травм). Заготовка крови в этом случае принципиально не отличается от описанной выше. Если забор крови производить из сердца, можно получить 80-90 мл на кг массы тела. Гепарин в этом случае вводится из расчета 120 ед/кг. Кровь от трупа можно забирать до 6 часов с момента гибели животного.

Для заготовки плазмы используют раствор следующего состава:

Ac. citrici 40.0

Ac. chlorici conc. 7 ml

Aq. destillatae 950 ml

На 900 мл крови добавляют 100 мл этого раствора. Кровь отстаивают в течение 1-2 часов, полученную плазму осторожно переливают в стерильные флаконы и запечатывают. При температуре –15оС плазму можно сохранять в течение 2 лет. Плазма богата белком, переливание ее показано при острых нарушениях свертываемости крови, гипопротеинемии, интоксикации, для повышения коллоидно-осмотического давления крови.

В повседневной практике врачам довольно часто приходится сталкиваться с проведением различных трансфузиологических операций. Мы остановимся на некоторых из них, имеющих наибольшее значение в лечении больных животных.

Реинфузия крови – переливание крови, излившейся в плевральную или брюшную полости. Реинфузия крови является очень эффективной мерой лечения и предотвращает осложнения, связанные с переливанием донорской крови. Показанием для реинфузии является любая кровопотеря, допускающая использование излившейся в полости (плевральная, брюшная и т.д.) крови. Противопоказаниями являются: гнойное загрязнение излившейся крови, загрязнение излившейся крови мочой или кишечным содержимым, кровотечения, связанные с разрывом матки, почечная недостаточность.

Чаще всего врачу приходится иметь дело с реинфузией крови при разрывах легкого, печени, селезенки, внутрибрюшинных разрывов крупных сосудов. Наиболее простой способ сбора излившейся крови заключается в простом вычерпывании ее из полости ложкой или вымакивания марлей (последний способ значительно хуже, т.к. приводит к существенному разрушению эритроцитов). При сборе крови ее сливают в стерильный флакон с одним из стабилизаторов (глюгицир, цитрат натрия и др.), предварительно профильтровав ее через 4 слоя стерильной марли. После этого флакон закрывают и переливают кровь по обычной методике, осуществляя ее микрофильтрацию через фильтр системы для переливания крови.

Вторым способом забора крови для реинфузии является введение перфорированного трубочного дренажа в брюшную или плевральную полость посредством лапаро- или торакоцентеза. Такой способ позволяет собрать и реинфузировать кровь до оперативного вмешательства, что значительно снижает риск анестезиологического обеспечения, особенно при политравмах, сопровождающихся разрывом паренхиматозных органов и массивной кровопотерей. При эвакуации крови из брюшной полости необходимо убедиться в целостности мочевого пузыря (для этого его необходимо катетеризировать до выполнения лапароцентеза). Небольшие же повреждения кишечника, не сопровождающиеся массивным загрязнением собираемой крови, не являются противопоказанием к ее реинфузии (Е.А. Вагнер с соавт., 1977).

Внутрикостные трансфузии достаточны просты в исполнении, могут использоваться в тех случаях, когда внутривенное введение жидкостей затруднено (гнойные поражения кожи, массивные отеки конечностей и т.д.), а также у щенков и котят. Трансфузии осуществляются внутрикостным введением иглы с мандреном (костномозговая игла Кассирского) в эпифизы костей, крыло подвздошной кости. Перед введением иглы выбривают участок кожи, обрабатывают его как операционное поле (во избежание остеомиелита), прокалывают иглой кожу и подлежащие ткани до кости, затем, преодолевая костный кортикальный слой, получают ощущение "провала" иглы, удаляют мандрен, внутрикостно вводят 0,5-2 мл 2%-го раствора новокаина и проводят инфузию растворов под давлением. По окончании манипуляции кожу обрабатывают йодом и кубатолом.

Аутогемотрансфузия – переливание крови больному животному, взятой у него заблаговременно. Обычно такая необходимость возникает при повторном переливании крови, когда предполагается большая операция с массивной кровопотерей. У животного заблаговременно берут кровь (за 1-2 недели до предполагаемой операции), а затем ее же переливают во время оперативного вмешательства.

Реинфузия асцитической жидкости в сосудистое русло возможна у животных, больных циррозом печени, имеющих выраженный асцит, рефракторный к обычной диуретической терапии. Это позволяет избавиться от большого количества жидкости в брюшной полости, сохранив при этом белок, восстановить его уровень в плазме. Технически это выполняется следующим образом: после пункции брюшной полости асцитическую жидкость собирают в стерильный флакон, и тут же вводят ее внутривенно капельно со скоростью 10 мл/кг в час. За 1 сеанс можно реинфузировать от 10 до 30 мл/кг асцитической жидкости. Такие реинфузии могут проводиться 2-4 раза через 1-2 суток.

При острой кровопотере инфузионно-трансфузионная тактика зависит от количества излившейся крови.

Введение жидкостей должно осуществляться в две вены одновременно с введением крови.

При острых заболеваниях органов брюшной полости (перитонит, острая кишечная непроходимость) инфузионно-трансфузионная терапия должна проводиться в течение 1-2 часов перед оперативным вмешательством. При низком центральном венозном давлении, выраженной тахикардии объем вводимой жидкости может достигать 0,5 мл/кг/мин – в первый час и в дальнейшем зависит от показателя ЦВД. Интенсивная терапия должна продолжаться во время операции и в послеоперацинном периоде. Проведение интенсивной терапии в этих случаях должно быть направлено на устранение гиповолемии, коррекцию водно-электролитного баланса и КОС, дезинтоксикацию, восстановление реологических свойств крови.

  • Образование раны в виде песочных часок.
  • ПеритонитPeritonitis
  • Абсцесс мошонки
  • Стафиломикоз семенного канатика
  • 11. Пододерматиты у коней. Причины, классификация, лечение и профилактика.
  • 12. Ревматическое воспаление копыт, причины возникновения, лечение и профилактика.
  • 13. Эпидуральная анестезия, показания, техника выполнения.
  • 14. Кастрация жеребцов.
  • 15. Инфекционный и инвазионный кератоконъюнктивит у животных, клинические признаки, лечение и профилактика.
  • 16. Клинические проявления хирургической инфекции, лечение и профилактика.
  • 17. Травматизм животных. Классификация, лечение и профилактика.
  • 18. Основные заболевания мышц. Классификация, лечение и профилактика.
  • 19. Хирургический сепсис у животных.
  • 20. Осложнения ран грудной полости.
  • Ситуаційні завдання з хірургії.
  • 3. На ділянці стегна у 10-місячного бика встановлено тверде, обмежене, болюче припухання тканин.
  • 4. При обстеженні бика 4-річного віку встановлено порушення прийому корму. В ротовій порожнині – збільшення язика.
  • 5. Лікар, діагностувавши актиномікоз підшкіряної клітковини на ділянці голови і т.П.
  • 6. У коня на ділянці правого ліктьового бугра при обстеженні виявлено припухання, 8 см в діаметрі і т.Д.
  • 7. У німецької вівчарки за допомогою клінічного і рентгенологічного дослідження виявлено перелом стегнової кістки.
  • 8. У молочному комплексі в серпні з’явилося массове ураження очей у корів, що утримувалися в літніх таборах. І т.Д.
  • 9. Клінічними дослідженнями у корови встановлено ознаки атонії передшлунків. Не з’ясувавши причин захворювання лікар ввів внутрішньовенно 2 мл настоянки кореневища білої чемериці. І т.Д.
  • 10. У бика плідника спостерігається загальне пригнічення, він стоїть дещо згорблений і т.Д.
  • 11. При обстеженні корови лікар виявив ундулюючу припухлість на ділянці гомілки. І т.Д.
  • 12. При обстеженні коня виявлена рана на ділянці заплесневого суглобу розміром 20*12 см і т.Д.
  • 13. У корови, яка хворіла раніше на післяпологове залежування, з латерального боку заплесневого суглобу виявлено припухання – обмежене, неболюче, флюктуююче, холодне і т.Д.
  • 15. У багатьох корів ферми виявлена своєрідна кульгавість тазових кінцівок: у стані спокою тварини дещо відводять кінцівки назад і вбік, опираючись, таким чином, зацепом переважно внутрішнього пальця.
  • Акушерство и гинекология
  • 1. Причини неповноцінних статевих циклів у корів і заходи до їх нормалізації.
  • 3 Характеристика нормальних родів і взаємовідносин плода і родових і шляхів. Заходи до організації пологових відділень.
  • 4. Переваги і недоліки оперативних: консервативних методів терапії . Затримки посліду у корів.
  • 5 Заходи щодо нормалізації відтворної функції у корів. Стимулирование полового аппарата.
  • 6. Влияние качественной неполноценности рациона на воспроизводительную функцию самок.
  • 7 Парувальна і запліднювальна імпотенція плідників.
  • 8. Заходи з терапії та профілактики після пологових субінволюції матки і ендометриту корів.
  • 9. Штучна неплідність та її різновиди. Заходи щодо її профілактики. Искусственно приобретенное бесплодие.
  • 10. Причини непродуктивних осіменінь самок
  • 1 1. Затримка посліду у корів та заходи з її профілактики.
  • 12. Застосування методів патогенетичної терапії у корів, хворих на мастит та ендометрит.
  • 13. Діагностика, терапія і профілактика субклічних маститів у корів. Субклинические маститы у коров.Диагностика, лечение.
  • 1 4. Характеристика, основних етапи Харківської технології асептичного отримання і кріоконсервації
  • 15. Асфіксія новонароджених. Невідкладна допомога при народженні плодів у стані гіпоксії і асфіксії. (Asphyxia neonatorum)
  • 16. Застосування трансплантації ембріонів у великої рогатої худоби у племінному господарстві, характеристика основних етапів цього методу.
  • 17. Кесарів розтин. Основні його етапи. Обгрунтуйте доцільність його використання.
  • 18. Передчаснї перейми та їх причини. Методи лікування і профілактики. Преждевременные потуги
  • 19.Ссновні правила допомоги тваринам при нормальних та патологічних пологах.
  • Помощь при патологических родах. Родоразрешающие операции
  • Расширение шейки матки (Incisio cervicis)
  • Кесарское сечение (Sectio caesarea)
  • Экстирпация беременной матки (Hysterectomia)
  • Искусственный аборт (Abortus artificialis)
  • 20.Патологія яєчників у корів. Методи дифєренцІйної діагностики. Методи лікування і профілактики.
  • Ситуаційні завдання з акушерства та гінекології
  • Перевод вертикального положения плода в нижнюю позицию путем бинтования конечностей и с применением клюки Кюна
  • 6. Серед корів дійної череди господарства часто спостерігають незаразні симптоматичні аборти. Які можливі причини? Розробіть заходи з профілактики.
  • 7. В господарстві 20-30% корів щорічно після пологів хворіють на мастит. Можливі причини? Ваші дії.
  • 8. При диспансеризації дійної череди встановлено, що 20% корів хворіють на субклінічній мастит. Причини? Розробіть заходи з профілактики.
  • 9. В зимово-стойловий період утримання у корів після пологів тривалий час відсутня стадія статевого збудження. Які можливі причини анафродізії? Ваші дії щодо нормалізації відтворної функції корів.
  • 10. В господарстві у корів спостерігаються запальні процеси зовнішніх статевих органів, піхви і шийки матки. Які можливі причини? Ваші дії.
  • Внутренние незаразные болезни
  • 1. Болезни молодняка
  • 2. Ацидоз рубца.
  • 3. Бронхопневмания.
  • 4. Болезни эндокарда.
  • 5. Болезни миокарда. Миокардит.
  • 6. Электролечение.
  • 7. Диетотерапия.
  • 8. Патогенетическая терапия.
  • 9. Дифференциабьный диагноз при болезнях печени.
  • 10. Болезни путей мочевыделения.
  • 11. Болезни, вызываемые недостаточностью витаминов гиповитаминозы.
  • 12. Микроэлементозы.
  • 13. Кетоз.
  • 14. Темпания рубца.
  • 15. Поражения почек.
  • 16. Дифференциальная диагностика колик у лошадей.
  • 17. Гастриты и гастроэнтериты.
  • 18. Диспансеризация крс
  • 19. Болезни нервной системы. Гиперемия и анемия головного мозга.
  • 20. Стресс.
  • 21. Болезни поджелудочной железы.
  • 22. Клеточные и гуморальные факторы иммунной защиты.
  • 23. Аллергические болезни.
  • 24. Анемии.
  • 25. Гемморагические диатезы.
  • 26. Нарушение углеводного, белкового и липидного обмена. (см. Кетоз)
  • 27. Макроэлементозы.
  • 28. Болезни эндокринной системы.
  • 29. Переполнение зоба, гастроэнтерит птицы.
  • 30. Болезни пушных зверей.
  • Ситуаційні завдання з внутрішніх незаразних хвороб
  • Токсикология
  • 1. Отравления натрия хлоридом
  • 2. Хлорорганические соединения.
  • 3. Пестициды: обозначение, классификация…
  • 4. Отравление нитратами и нитритами.
  • 5. Отравления синильной кислотой.
  • 6. Фосфорорганические соединения
  • 8. Производных мочевины и фенилмочевины.
  • 9. Производные карбаминовой, тио-и дитиокарбаминовой кислот (карбаматы)
  • 10. Клинико токсикологическая классификация ядовитых растений.
  • 12. Микотоксикозы.
  • 13. Синтетические пиретроиды
  • 14. Отравления животных солями меди, мышьяка и фтора. Медьсодержащие соединения
  • 15. Методы ветеринарно-санитарной токсикологической оценки продуктов животноводства.
  • Ситуаційні завдання з токсикології.
  • 4. Після згодовування коровам запарених кормових буряків з відваром розвинулися явища іктоксикації: збудження, а внедовзі пригнічення,
  • 6.У свиноматок, яким на протязі тижня згодовували цвілий зернофураж, розвинулися симптоми: почервоніння і збільшення вульви, а у деяких
  • 9. Після згодовування свиням скошеної напередодні зелененої маси люцерни
  • 6. Переливание крови у животных. Группы крови, стабилизаторы.

    При потере большого количества крови введение изотонических жидкостей недостаточно; в таких случаях кровяное давление после кратковременного повышения вновь катастрофически падает. В подобных условиях эффективным является переливание крови.

    До начала XX века попытки воспользоваться кровью донора с целью возмещения кровопотерь предпринимались многократно и результаты их в условиях эксперимента на собаках были много­обещающими; у человека же в результате переливания крови наступали тяжелые осложнения, часто заканчивавшиеся смертью. Такие же явления наблюдали при гемотрансфузии у лошадей. Было также выяснено, что дефибринирование крови не устраняет эти осложнения.

    Причины неудач переливания крови стали ясными при исполь­зовании на практике учения об агглютинации. Подобно тому, как сыворотка иммунных животных склеивает в комки соответствую­щие бактерии, кровь животного одного вида склеивает эритроци­ты животного другого вида. Это явление, именуемое гетерогемо-агглютинацией, в последующем было установлено и в пределах одного вида (изогемоагглютинация). После склеивания в комки эритроциты растворяются в сыворотке (гемолиз).

    Ландштейнер (1901) различал три группы крови. Позже (1907 г.) Янский выделил четвертую, характеризующуюся тем, что ее сы­воротка не агглютинирует эритроциты остальных групп, ее же эритроциты агглютинируются сыворотками всех групп. Наличие четырех групп крови было самостоятельно установлено также Моссом (1910). Дунгерн и Гиршфельд (1911) пришли к выводу, что для объяснения факта существования четырех групп крови допускать наличие двух агглютининов (а,Р) в сыворотке мух агглютининогенов (А, В) в эритроцитах. У лошади и крупного рогатого скота, согласно имеющимся И1.Ш, практически применимо такое же деление групп крови

    Л. Герман, В. Н. Чередков и др.). Агглютинация эритроцитов разных групп крови сыворотками

    (ставлена в следующей таблице.

    1) кровь первой группы можно переливать животным всех остальных групп, так как ее эритроциты не агглютинируются и*с сыворотками;

    2) сыворотка крови четвертой группы лишена способности агглютинировать эритроциты: животным с кровью этой группы можно переливать кровь всех остальных групп;

    3) кровь второй группы можно переливать животным с кровью второй и четвертой групп;

    4) кровь третьей группы можно переливать животным с кровью третьей и четвертой групп.

    Допустимость переливания крови разных групп наглядно пред­ставлена на схеме рисунка 2.

    Необходимо учитывать возможность агглютинации эритроци­тов переливаемой крови сывороткой реципиента. Меньшее зна­чение имеет обратное явление - агглютинация эритроцитов реци­пиента сывороткой донора, так как разведение сыворотки донора в крови реципиента ослабляет ее агглютинационную способность. Сыворотка крови лошади и крупного рогатого скота в срав­нении с сывороткой крови человека обладает слабо выражен­ными агглютинационными свойствами.

    У собак, групповые различия крови отсутствуют. Поэтому у них допустимо однократное переливание кро­ви без ограничений, обуслов­ленных изогемоагглютинанацией. Повторные гемотрансфузии от одного и того же донора у животных всех видов сопро­вождаются сравнительно часто тяжелыми, иногда со смертель­ным исходом, анафилактоидными реакциями. Несовместимость крови, возникающая после первой гемогрансфузии, объясняет­ся появлением в плазме реципиента изоиммунных антител. Они образуются в качестве ответной реакции организма на введе­ние крови как специфического изоантигена. Посттрансфузионные осложнения наблюдаются также при переливании крови другого донора. Определение совместимости крови.

    Совместимость крови донора и реципиента можно установить путем перекрестной агглютинации. Из вены до-пора и реципиента берут tf разные пробирки по 10 мл крови и дают ей отстояться до полного свертывания. Отделившуюся сыворотку сливают в другие пробирки, а из сгустков крови после прибавле­ния некоторого количества физиологического раствора взбалтыва­нием готовят взвеси эритроцитов. Полученные сыворотки и взвеси аритроцитов проверяют на взаимную агглютинацию. Для этого на предметное стекло помещают отдельно по две капли сыворотки, прибавляют к ним перекрестно по маленькой капле взвеси эритро­цитов, смешивают стеклянной палочкой или покачиванием, лег­ким встряхиванием и в течение 5 минут наблюдают за ходом реак­ции.

    Агглютинация отсутствует в обеих пробах, когда донор и реци­пиент принадлежат к одной группе. Наличие агглютинации в сы­воротке реципиента при отсутствии ее в сыворотке донора слу­жит противопоказанием к переливанию. При отрицательной ре­акции в сыворотке реципиента и положительной реакции в сыво­ротке донора переливание допустимо в ограниченных количествах.

    В практике переливания крови у животных возможна также прямая проба. При этом описанным выше способом смеши­вают две капли сыворотки реципиента с каплей крови, взятой из уха намечаемого донора. Положительная реакция указывает на необходимость подобрать в качестве донора другое животное.

    Определение групп крови с помощью стандартных сы­вороток имеет значительные преимущества, позволяя свое­временно выделять животных-доноров, удовлетворяющих всем тре­бованиям практики. В СССР такие сыворотки для лошадей впер­вые приготовил В. А. Герман (1935).

    Для определения групповой принадлежности крови достаточ­но иметь стандартные сыворотки второй (А) и третьей (В) групп. На предметном стекле, белой тарелке или блюдце на некотором отдалении одна от другой ставят пометки - II, III. У этих поме­ток наносят по две капли соответствующих сывороток. Затем к последним прибавляют по маленькой (с булавочную головку) кап­ле исследуемой крови. При покачивании стекла кровь смешивает и с сывороткой, придавая ей равно­мерно красный огтенок. Через 20- "О, секунд появляются признаки итлютинации в одной из сывороток или в обеих, или же агглютинация от­сутствует (окучивания эритроцитов не наблюдается). Отсутствие агглю-iинации в обеих сыворотках указы-иает на принадлежность крови к пер-пой (0 оф) группе, агглютинация в обеих сыворотках - на кровь четвер-юй (АВО) группы, агглютинация юлько в сыворотке третьей группы - на кровь второй (А(3) группы, агглю-!инация только в сыворотке второй i руппы - на кровь третьей (Ва) ™ i руппы (рис. 3). Реакцию ставят при измпературе воздуха в пределах 15-20°. За ходом реакции наблю­дают не меньше Г) минут. Возмож­ные ошибки при пользовании двумя (ыворотками надежно устраняются дополнительной контрольной реакцией с сывороткой первой группы: когда в последней агглютинация отсутствует, ее не должно быть и в обеих других.

    Псевдоагглютинация напоминает истинную за­метным просветлением сыворотки, возникающим в обычный срок. Она сравнительно часто наблюдается у животных, характеризует­ся скучивлнием эритроцитов в монетные столбики и особенно резко выражена у лошадей, что объясняют (И. П. Власовский и др.) малым содержанием в их крови лецитина. Распознавать псевдо­агглютинацию нетрудно: при сотрясении капли или прибавлении к ней физиологического раствора сыворотка вновь становится рав­номерно красной. Применение разведенных эритроцитов обычно предупреждает псевдоагглютинацию.

    П а и а г г л ю т и н а ц и я возникает большей частью, если реакцию ставят при низкой температуре. В этом случае сыворотка агглютинирует эритроциты крови всех групп, в том числе и своей; реакция протекает до 30 минут. Иногда трудно отличить ее от истинной агглютинации.

    В практике удобно пользоваться универсальными донорами, то есть животными с кровью первой (Ооф) группы. При гемотрансфузии средних доз от таких доноров редко на-блкГдаются осложнения (при необходимости переливания боль­ших количеств крови донор и реципиент должны быть одной группы).

    В выборе доноров строго соблюдают условия, исключающие перенос с кровью инфекционных заболеваний.

    Способы переливания крови

    Переливание крови осуществляется или непосредственно от донора реципиенту (прямой метод), или обычным способом внутривенных вливаний стабилизированной крови (непрямой метод).

    Прямой метод гемотрансфузии путем сообщения вен донора и реципиента через специальные аппараты (рис. 4) прост. Система трубок аппарата промывается жидким вазелиновым мас­лом и 4%-ным раствором лимоннокислого натрия, чем в известной мере предотвращается травмирование кровр и образование сгуст­ков.

    У крупных домашних животных удобоприменим способ соеди­нения вен донора и реципиента резиновой трубкой с оливой (рис. 5), снабженной иглами на концах. Донора помещают на возвышенную площадку. В его яремной врне пелотом, наложенным у основания шеи, создается повышенное давление крови (рис. 6). Пункцию ве­ны делают одновременно у обоих животных. В этот момент система трубок должна быть разобщена у иглы реципиента, а свободный конец трубки опущен вниз. Когда кровь начинает вытекать равно­мерной струей, этот конец трубки присоединяют к игле, и кровь поступает в вену реципиента. Чтобы знать дозировку переливаемой крови, необходимо предварительно определить пропускную спо­собность собранной системы. При условии, что в течение 1 минуты

    через систему протекает 100 мл крови, для переливания 2 л потребуется 20 минут.

    Трубку стерилизуют кипячением в собранном виде, затем внутренние стенки ее смачивают стерильным вазе­линовым или камфорным маслом. Смы­вающийся со стенки канала иглы, трубки и оливы остаток масла уносит­ся током первых порций крови, выте­кающей до момента соединения труб­ки с иглой реципиента. За током крови можно следить на стенке косо поставленной оливы.

    Место пункции вен при продол­жительных вливаниях обезболивают (инфильтрационная анестезия).

    При непрямом методе кровь поступает из вены донора в сосуд, где смешивается для предот­вращения свертывания со стабили­затором - лимоннокислым натрием: 4%-ный раствор его, приготовлен­ный на дважды дистиллированной воде, наливают в сосуд из расчета 100 мл на 1 л крови, получаемой от донора. В этом сосуде, помещенном в теплую (37-40°) воду и равномерно покачиваемом, кровь смешивают со ста­билизатором. Реципиенту ее вводят внутривенно. Цитрированная кровь, сохраняемая при температуре 4°, не свертывается в течение 7-10 дней. В таком виде ее можно транспортиро­вать на значительные расстояния, что представляет большое преимущество не­прямого метода гемотрансфузии.

    Рис. 4. Прибор для прямого переливания крови. Рис. 5. Трубочная системадля прямого переливания крови у животных по И. Е. Поваженко: а - игла для пункции вены донора, *б - игла для пункции вены реципиента, виг - рези­новые трубки, д - стеклянная олива.

    В ветеринарной практике в качестве кратковременного стабилизатора ис­пользуют хлористый кальций (150 мл 10%-ного раствора на 1 л крови лоша­ди). Он у крупного рогатого скота как и 10%-ный раствор салициловокислого натрия, менее пригоден для гемотранс­фузии; требуется сравнительно высокая концентрация (2: 10, 3: 10) препарата в крови.

    Перед переливанием крови обяза­тельна биологическая проба. Она заключается в инфузии неболь­шого количества (200-300 мл для ло­шади) крови с последующим наблюде­нием за реципиентом в течение 10 ми­нут. При несовместимости крови у него возникают симптомы гемолитического шока; нормальное состояние его в течение этого

    срока окончательно подтверждает совместимость крови. Намеченное количество ее вводят медленно, не больше 100 мл в 1 минуту.

    Механизм действия перелитой крови

    Положительное влияние пере­литой крови сказывается незамед­лительно. Вместе с ней в организм реципиента вводятся ферменты, гормоны, белки, органические соли. При значительной кровопотере одни эритроциты в физиологиче­ском растворе, как и другие изо­тонические жидкости, не способны поддерживать жизнь,тогда как сыворотка совместимой крови без эритроцитов оказывает такое же благотворное влияние, как и цельная кровь.