혈액검사를 위한 최적의 시간은 채혈 후 1~4시간이며, 5~30분 정도에는 혈소판이 일시적으로 항응고제에 적응하여 응집이 일어나 혈액 내 잘못된 감소를 초래할 수 있습니다. 견본.

채혈 후 8시간 이후에는 혈액을 검사하는 것이 바람직하지 않습니다. 일부 세포 특성은 변합니다. 즉, 백혈구의 양이 감소하고 적혈구의 양이 증가하여 궁극적으로 잘못된 측정 결과와 결과의 잘못된 해석으로 이어집니다. 혈액을 보관하는 24시간 동안 헤모글로빈 농도와 혈소판 수치만 안정적으로 유지됩니다.

혈액은 얼려서는 안 됩니다. K 2 EDTA가 함유된 모세혈은 실온에 보관해야 하며 수집 후 4시간 이내에 분석해야 합니다.

고품질의 연구 결과를 보장하기 위해서는 분석을 수행하기 전에 시료의 보관 기간과 보관 조건을 명확하게 제어하는 ​​것이 필요합니다.

지연된 분석이 필요한 경우(장거리 운송, 기기의 기술적 오작동 등) 혈액샘플을 냉장고(4o~8oC)에 보관하고 24시간 이내에 검사합니다. 그러나 세포 부종 및 부피와 관련된 매개변수의 변화가 발생한다는 점을 고려해야 합니다. 실질적으로 건강한 사람들의 경우 이러한 변화는 중요하지 않으며 정량적 매개변수에 영향을 미치지 않지만 병리학적 세포가 있는 경우 후자는 혈액을 채취한 후 몇 시간 이내에 변경되거나 심지어 파괴될 수 있습니다.

검사 직전에 항응고제를 희석하고 형성된 성분을 혈장에 균일하게 분포시키기 위해 혈액을 몇 분 동안 완전히 혼합해야 합니다. 검사할 때까지 샘플을 장기간 지속적으로 혼합하는 것은 병리학적 세포의 손상 및 부패 가능성으로 인해 권장되지 않습니다.

자동 분석기의 혈액 검사는 실온에서 수행됩니다. 냉장고에 보관된 혈액은 먼저 실온으로 데워야 합니다. 낮은 온도에서는 혈액의 점도가 증가하고 형성된 성분이 서로 달라붙는 경향이 있어 혼합이 손상되고 불완전하게 용해되기 때문입니다. 냉혈 검사는 백혈구 히스토그램의 압축으로 인해 "경보 신호"를 유발할 수 있습니다.

채혈 장소로부터 상당한 거리를 두고 혈액학 연구를 수행할 때, 불리한 운송 조건과 관련된 문제가 필연적으로 발생합니다. 기계적 요인(흔들기, 진동, 교반 등), 온도 조건, 유출 가능성, 시료 오염 등이 분석 품질에 영향을 미칠 수 있습니다. 이러한 원인을 제거하기 위해 혈액 튜브를 운반할 때 밀봉된 플라스틱 튜브와 특수 절연 운반 용기를 사용하는 것이 좋습니다. 운송 중에는 생물학적 안전 규정에 따라 시료(천연 물질 포함)와 의뢰서의 접촉이 허용되지 않습니다.

^ 4.3. 생물학적 물질의 접수 및 등록

정맥혈 샘플이 담긴 튜브는 생물학적 물질 전달을 위해 특수 백에 담긴 랙에 수집 당일 실험실로 전달됩니다. 이 경우 튜브는 수직 위치에 있어야 하며 먼 거리로 운송할 때는 특수 용기에 넣어야 합니다.

재료를 받는 실험실 직원은 다음을 확인해야 합니다.

추천 등록의 정확성: 추천 양식에는 검사를 받는 사람의 데이터(성, 이름 및 부칭, 연령, 병력 또는 외래 환자 카드 번호, 부서, 진단, 수행된 치료)가 표시됩니다.

혈액 샘플이 포함된 튜브 라벨링(연구용 자료 전송 양식의 코드 및 성과 동일한 환자의 코드 또는 성이 표시되어야 함). 실험실 조교는 전달된 재료를 등록하고 튜브 수를 기록해야 합니다.

^ 4.4 혈액학 분석기에서 혈액의 세포 구성 계산

혈액학 분석기에서 혈액의 세포 구성을 계산하는 작업은 해당 장치의 지침을 엄격히 준수하여 수행해야 합니다.

혈액학 분석기를 사용할 때 다음을 수행해야 합니다.

혈액학적 연구를 위한 특정 소금 및 일회용 튜브(단순 또는 진공)에 권장되는 비율로 K-2 EDTA로 안정화된 혈액을 사용하십시오.

분석하기 전에 시험관을 혈액과 조심스럽지만 철저하게 혼합하십시오(이 목적을 위해 혈액 샘플 혼합 장치인 로토믹스를 사용하는 것이 좋습니다).

정해진 절차에 따라 등록된 시약을 사용합니다. 시약을 다른 제조업체의 제품으로 변경할 경우 장치의 보정을 확인하고 설정해야 합니다.

장치를 시작하고 세척의 모든 단계를 관찰하고 모든 채널에서 표시기의 0(배경) 값을 달성합니다.

가능한 체계적 오류에 대한 장치 메시지에 주의하십시오. MSHC가 정상 값보다 증가하는 것은 일반적으로 측정 오류의 결과라는 점을 기억하십시오.

오류가 감지되면 원인을 제거하고 결함이 있는 장치에서는 작업을 수행하지 마십시오.

적절한 프로그램에 따라 품질 관리 절차를 수행합니다. 얻은 결과에 대한 평가와 함께;

얻은 결과를 환자 샘플의 임상적 특성과 비교하여 의미 있게 작업합니다.

측정을 완료한 후 분석기를 철저히 헹구십시오.

장기간 장치를 정지하는 경우 모든 보존 절차를 반드시 수행하십시오(가능한 경우 서비스 엔지니어와 함께).

기술적인 문제가 발생하면 기술 유지 관리 라이센스를 보유한 회사의 서비스 엔지니어의 도움을 받아야 합니다. 훈련받지 않은 직원에게 작업을 맡기지 마십시오.

혈액학 분석기 작업을 시작할 때 분석된 매개변수 측정의 선형성 한계를 고려해야 합니다. 측정 선형성 한계를 초과하는 분석된 매개변수 값으로 샘플을 평가하면 잘못된 결과가 발생할 수 있습니다. 대부분의 경우, 과다세포증이 있는 샘플을 분석할 때 분석기는 측정된 매개변수의 값 대신 "D"(희석) 아이콘을 표시합니다. 이는 샘플을 희석하고 측정을 반복해야 함을 나타냅니다. 가장 가까운 두 개의 희석으로 유사한 최종 결과를 얻을 때까지 희석을 수행해야 합니다.

^ 예 ─ 세 가지 다른 혈액학적 분석기를 사용하여 고백혈구증가증 환자의 샘플을 분석한 내용이 표에 나와 있습니다.

표 3

¦3개의 서로 다른 혈액분석기로 수행한 고백혈구증가증의 양을 계산한 결과

^ 혈액학 분석기	샘플 희석 정도				총 가치
	^ 전혈	1:1	1:3	1:4	WBC
1	디	274,5	274,5	143,1	715,5
2	322,6	253,2	177,7	141,8	709,0
3	디	디	168,3	139,1	695,5

표에 따르면 전혈을 분석할 때 한 분석기(2차)만이 백혈구 수에 대한 디지털 값을 제공했고 나머지 두 분석기는 샘플을 희석해야 함을 나타냈습니다. 이후 3가지 희석으로 샘플을 단계별로 측정함으로써 1:3 및 1:4 희석만으로 모든 기기에서 유사한 최종 결과를 얻을 수 있었습니다. 따라서, 최종 백혈구 수치는 700.0 - 710.0 x 10 9 /l로 2차 분석기에서는 전혈에서 초기에 얻은 값보다 2배 이상 높았고, 1차와 2차 분석기에서는 1:1 희석으로 1.5 - 로 나타났습니다. .

1. 
   ^ 혈액학 분석기의 교정

교정은 분석기를 설정하는 절차를 말하며, 그 결과

이는 오류의 체계적 구성요소가 0(제로 오프셋)과 동일함을 달성하거나 교정 오류를 고려하여 오프셋이 0과 같음을 확인합니다. 혈액학 분석기의 교정은 두 가지 주요 방법으로 수행할 수 있습니다.

전혈의 경우;

인증된 값으로 안정화된 혈액 샘플을 기반으로 합니다.

^ 5.1 전혈을 사용한 보정

전혈 교정은 교정이 검증된 참조 분석기와 비교하여 수행할 수 있으며 참조로 사용할 수 있습니다.

기준 분석기와 비교하여 보정하려면 기준 분석기가 있는 실험실의 일일 연구 프로그램에서 무작위로 선택된 20명의 환자 정맥혈 샘플을 사용합니다. 항응고제 K 2 EDTA가 들어 있는 진공관에 혈액을 수집해야 합니다. 기준 분석기로 분석한 후, 혈액 튜브는 보정된 장치에서 분석하기 위해 실험실로 전달됩니다. 기준 분석기와 교정 분석기의 측정 사이의 시간은 4시간을 초과해서는 안 됩니다. 교정 중인 기기의 교정 샘플 분석은 환자 샘플 분석과 동일한 방식으로 수행되어야 합니다. 얻은 결과는 부록 1에 제공된 형식으로 표에 입력됩니다. 이 결과는 그래프의 좌표 원점을 통과하는 교정 선의 기울기 계수와 수치적으로 동일한 해당 교정 계수를 결정하는 데 사용됩니다.

교정 계수는 모든 버전의 Microsoft OFFICE 패키지에 포함된 EXCEL 프로그램을 사용하여 컴퓨터에서 계산됩니다. 이 프로그램에서는 교정 계수를 계산하기 위해 측정값을 X축에 표시하고 기준 값을 Y축에 표시하며 좌표 원점을 통해 회귀선을 설정하는 분산형 다이어그램을 구성합니다. 프로그램은 교정 선을 그리고 원하는 교정 계수인 기울기를 결정합니다. 총 오류가 감지되면(그래프의 교정 선에서 크게 제거된 점이) 계산에서 제거되어야 합니다(EXCEL 테이블의 전체 선 삭제). 결과 교정 계수는 부록 1의 표에 입력되며 작동 지침에 따라 장치 교정을 수동으로 조정하는 데 사용됩니다.

1. 
   ^ 인증된 값으로 안정화된 혈액 샘플을 사용한 교정

이 교정 방법은 안정화된 인간 적혈구와 백혈구 및 혈소판을 모방하는 고정 인간 또는 동물 세포의 인공 혼합물인 상업용 교정 및 제어 물질을 기반으로 합니다. 천연 혈액과 이들 물질 구성 요소의 생물학적 특성이 크게 다르기 때문에 인증된 혈액학적 매개변수 값은 특정 유형의 분석기에 따라 다릅니다.

가능하다면 특정 유형의 분석기를 교정하기 위해 제조업체가 특별히 설계한 교정기를 사용해야 합니다. 최신 혈액학 교정기의 설정점 오류는 일반적으로 의료 요구 사항과 일치합니다. 그러나 이러한 교정기는 모든 유형의 분석기에 사용할 수 없습니다. 또한 유통기한이 제한되어(보통 45일 이내) 유통기한이 지나지 않은 샘플을 얻는 것이 항상 가능한 것은 아닙니다.

제어 물질은 교정 목적으로 제조업체에서 의도한 것이 아닙니다. 값의 허용 오차는 훨씬 더 넓고 인증 및 생산 제어 방법은 교정기만큼 엄격하지 않습니다. 교정 시 제어 재료는 장치의 도량형 특성에 대한 정보의 한 소스로만 사용할 수 있습니다.

그러나 교정 목적으로 대조 물질과 교정물질을 모두 사용하는 경우 시료 준비 및 분석기 작동 기능이 체계적 오류 구성요소에 상당한 영향을 미친다는 점을 명심해야 합니다. 상업용 재료로 교정할 때는 이러한 영향 요인을 고려할 수 없습니다. 따라서 모든 경우에 수행된 보정은 환자 샘플에서 얻은 결과(적혈구 지수, 정상 범위)의 통계를 분석하여 검증해야 합니다.

5.2.1 혈액학 분석기의 교정 빈도

교정 빈도에 대한 요구 사항은 일반적으로 분석기의 작동 지침에 포함되어 있습니다. 일반적으로 수리 후 또는 내부 실험실 품질 관리 절차에서 상당한 드리프트가 감지된 경우 교정이 필요합니다.

5.2.2 교정 절차

교정 절차는 분석기의 작동 지침에 따라 수행됩니다.

5.2.3 교정 결과 모니터링

이 제어는 교정 직후 교정 샘플을 분석하는 것으로 구성됩니다. 분석기의 분석 변화를 고려하여 분석 결과가 교정 값과 일치하면 완료된 교정이 허용됩니다.

5.2.4 적혈구 지수를 이용한 보정 검증

교정을 확인하고 개선하는 이 방법은 환자 간 적혈구 지수(MCHC, MCH 및 MCV)의 평균값의 변동이 매우 작기 때문에 교정 제어 및 추가 품질 관리에 효과적으로 사용될 수 있다는 사실을 활용합니다. 평균화를 위해 권장되는 샘플 수는 20개입니다. 평균 MCHC를 결정하는 데는 모든 환자 샘플을 사용할 수 있지만, 평균 MCHC 및 MCV를 결정하려면 빈혈 환자를 제외해야 합니다.

많은 최신 혈액학 분석기에는 현재 평균을 계산하는 프로그램이 내장되어 있어 데이터 처리가 매우 용이합니다.

성별에 상관없이 18~60세 환자 20개 이상의 표본을 평균했을 때 적혈구 지수의 목표값은 표 4와 같다.

표 4

적혈구 지수의 목표 값

얻은 평균값이 제어 허용 오차를 벗어나면 MCV, Hgb 또는 RBC 교정을 조정해야 함을 의미합니다.

상업용 보정/대조 물질을 사용할 때 적혈구 매개변수의 불만족스러운 보정 이유를 판단할 때, 해당 물질의 인증된 값에 대한 신뢰성에 대한 다음 평가를 고려해야 합니다.

가장 정확하고 시간이 안정적인 매개변수는 적혈구 농도입니다.

안정적인 매개변수는 Hgb이지만 사용되는 시약(예: 시아노겐 또는 시아노겐 없음)에 따라 달라질 수 있습니다.

가장 불안정한 매개 변수는 MCV입니다. MCV 값은 재료의 전체 유효 기간 동안 상당히 넓은 범위의 값으로 변경되는 경향이 있습니다. MCV 보정을 개선할 때 평균 적혈구 지수 분석을 통해 얻은 데이터는 안정화된 혈액 샘플의 인증된 값보다 우선합니다.

RBC 보정이 정확하다고 가정하면 표 5는 평균 지수 값이 제어 허용 오차를 벗어나는 가능한 이유를 보여줍니다.

표 5

적혈구 지수의 평균값을 초과하는 이유

적혈구 지수	평균 지수 값	평균 지수 값	평균 지수 값	평균 지수 값
MCHC	국경 아래	국경 위	국경 위	국경 아래
MCH	허용한계 이내	허용한계 이내	국경 위	국경 아래
MCV	국경 위	국경 아래	허용한계 이내	허용한계 이내
원인	MCV가 너무 높음	MCV 감소	Hgb가 너무 높네요	Hgb가 낮습니다

수집, 보관 및 운송 지침

실험실 연구용 생물학적 재료

생물학적 물질은 라벨이 붙은 튜브(용기)에 담겨 있어야 하며, 작성된 개별 의뢰 양식 사본 1부가 첨부되어야 합니다. 날짜, 시험관 번호, 검사를 위해 생체 물질을 보낸 의료 시설의 이름, 물질을 수집한 의사의 이름 등의 정보를 포함하여 추천서를 주의깊고 읽기 쉽게 작성해야 합니다. 환자의 성명, 연령 및 성별, 예비 진단; 임신 중 - 재태 연령. 생물학적 물질 접수: PCR 및 면역화학 혈액 검사- 와 함께 09:00 ~ 전에 18:00 주말과 공휴일을 제외하고. 세균학 연구- 와 함께 09:00 ~ 전에 11:00 금요일, 주말, 공휴일 전, 공휴일을 제외합니다.

PCR법을 이용한 병원체 식별용

1.1.1. 생체재료는 미생물의 서식지와 감염이 의심되는 곳에서 채취됩니다.

1.1.2. 수집되는 물질의 양은 적어야 합니다. 과도한 분비물, 점액 및 고름은 DNA 추출 품질에 부정적인 영향을 미치고 보관 및 운송 중 DNA 분해에 기여합니다.

1.1.3. 면봉이나 브러시를 사용하여 프로브를 사용하여 환자에게서 채취한 생체재료를 완충액이 들어 있는 Eppendorf 튜브에 주입하는 경우 다음이 필요합니다.

불임 유지;

면봉(브러시)에 채취한 생체재료를 용액에 담그기 전, 시험관의 마른 벽에 도말한 후 면봉(브러시)을 용액에 적시고 프로브를 회전시키면서 시험관의 모든 물질을 철저히 헹구십시오. 시험관 벽과 면봉(브러시);

가능하다면 면봉을 시험관 벽에 대고 꽉 쥐고 면봉(브러시)으로 탐침을 제거한 다음 시험관을 닫으십시오.

1.2. PCR 연구를 위한 생체물질 수집 방법

1.2.1. 긁힌 것.긁기의 경우 흡착력이 향상된 면봉 또는 "브러시"가 달린 일회용 멸균 프로브가 사용되며 덜 자주 사용됩니다. Volkmann 숟가락, 작은 이어 스푼 또는 가장자리가 약간 무딘 유사한 도구입니다. 긁는 동작을 사용하여 재료를 수집합니다. 연구 중인 물질은 가능한 최대 수의 상피 세포와 최소량의 점액, 혈액 및 삼출물을 포함해야 합니다. 완충 용액이 포함된 멸균 Eppendorf 튜브에 재료를 추가합니다(섹션 1.1 참조).

자궁 경관에서 긁어내기: 긁기 전에 멸균 면봉으로 과도한 점액을 제거하고 멸균 식염수로 자궁 경부를 치료해야합니다. 질벽과의 접촉을 피하면서 프로브를 자궁경관에 0.5-1.5cm 깊이로 삽입하고 긁는 동작으로 물질을 수집합니다(혈액이 나올 때까지는 아님). 검체 내 적은 수의 적혈구는 분석 결과에 영향을 미치지 않습니다. 자궁경부가 침식된 경우, 건강한 조직과 변형된 조직의 경계에서 물질이 채취됩니다.

요도 긁기: 프로브를 요도(남성의 경우 - 2-4cm 깊이)에 삽입하고 여러 번의 회전 운동으로 재료를 수집합니다. 자료 복용 전날에는 도발(매운 음식, 술 등)이 허용됩니다. 검체 채취 전 1~2시간 동안 소변을 보지 않는 것이 좋습니다. 화농성 분비물이 많으면 배뇨 후 15분 이내에 긁어내야 합니다.

결막 긁기 0.5% 디카인 용액으로 눈을 마취시킨 후 복용합니다. 눈꺼풀을 뒤집은 후 탐침과 면봉(또는 눈 메스)을 사용하여 결막에서 상피 세포를 수집합니다.

직장 긁기: 프로브를 항문에 3~4cm 깊이로 삽입하고 회전 운동으로 물질을 수집합니다.

1.2.2. 뇌졸중.면봉이나 브러시가 포함된 일회용 멸균 프로브를 사용하여 소량의 분비물(질정원, 인두, 비인두 등)을 채취하고 완충액이 들어 있는 멸균 Eppendorf 튜브로 옮깁니다(섹션 1.1 참조).

1.2.3. 피. PCR 연구를 위해서는 혈액이 다음과 같아야 합니다. 토종의(말리지 않음).

정맥 천자를 통해 무균적으로 혈액을 EDTA 항응고제( 헤파린은 항응고제로 사용할 수 없습니다!), 부드럽게 혼합하고 시험관을 부드럽게 돌립니다.

EDTA가 포함된 혈액은 다음 연구 그룹을 위한 생체 재료입니다.

- 유전 연구(채혈 시점은 중요하지 않습니다.)

- 감염원 식별(가장 유익한 것은 오한, 발열, 즉 아마도 바이러스혈증 또는 균혈증 중에 채취한 샘플입니다).

1.2.4. 오줌.뚜껑이 단단히 닫혀 있는 빈 멸균 용기에 최소 10ml의 첫 소변 또는 오전 중반 소변을 수집합니다. 낮 동안 소변을 채취하는 경우, 그 전에 환자는 1.5-3시간 동안 소변을 보지 않아야 합니다.

1.2.5. 담.아침에는 입과 목을 소독합니다(베이킹 소다 용액으로 헹굽니다). 입구가 넓고 멸균된 빈 병에 객담을 수집합니다.

1.2.6. 생검.물질은 감염원이 있을 것으로 예상되는 지역, 손상된 조직 또는 손상 경계 지역에서 채취됩니다. 생검 샘플을 완충액이 들어 있는 멸균 Eppendorf 튜브에 넣습니다.

1.2.7. 타액, 위액, 뇌척수액, 윤활액.타액(1~5ml), 위액(1~5ml), 뇌척수액(1~1.5ml) - 빈 멸균 튜브(용기)에 담습니다.

1.2.8. 전립선 주스.전립선 마사지 후 주스를 0.5-1ml의 양으로 빈 멸균 튜브 (용기)에 수집합니다. 주스를 얻을 수 없는 경우 마사지 직후 첫 번째 소변 부분을 10ml 이하로 수집하십시오(이 부분에는 전립선 주스가 포함되어 있음).

1.2.9. 세척, 기관지폐포 세척(BAL).예를 들어 내시경이나 기관지경의 끝부분을 헹구는 데 멸균 면봉과 5~7ml의 생리용액을 사용하고, 0.5~5ml의 헹굼액을 빈 멸균 튜브(용기)에 넣습니다.

1.2.10. 대변.면봉이 달린 탐침을 대변 내부에 놓고 살짝 돌려 소량의 물질을 포착합니다. 그런 다음 물질을 완충 용액이 들어 있는 멸균 Eppendorf 튜브에 넣습니다.

1.3. PCR 연구용 생물학적 물질 보관 규칙

1.3.1. 얼룩, 긁힘:

최대 7일 동안 냉장고에 보관(+4°С - +8°С)합니다.

냉동실(-20°С)에서는 최대 14일 동안 보관할 수 있습니다(해동은 1회만 허용됩니다!).

1.3.2. 오줌: 냉장고에 (+4°С - +8°С) 1일 이내;

1.3.3. EDTA를 함유한 혈액: 냉장고에 (+4°С - +8°С) - 감염원 확인을 위해 - 1일 이내; 유전 연구의 경우 – 최대 4일. 냉동할 수 없습니다.

1.3.4. 담

1.3.5. 생검:

냉장실 (+4ºС - +8ºС)에서 1일 이내,

냉동실(-20°С)에서는 최대 2주 동안 보관할 수 있습니다.

1.3.6. 전립선 주스: 냉장고에 1일 이상 보관하지 마세요(+4°С - +8°С).

1.3.7. 윤활액: 냉장고에 1일 이상 보관하지 마세요(+4°С - +8°С).

2. 혈액 수집, 보관 및 운송 규칙

면역화학 연구를 위해

2.1.1. 채혈 전날에는 신체 활동, 스트레스가 많은 상황, 물리 치료 절차, 약물 복용(의사가 처방한 약물의 경우 제외), 경구 피임약, 알코올 음료 및 지방이 많은 음식 섭취를 피하십시오. 검사 직전에는 담배를 피우지 마십시오.

2.1.2. 갑상선 호르몬을 함유한 약물로 치료하는 동안 갑상선 기능을 연구할 때 연구는 약물의 마지막 투여 후 24시간 후에 수행됩니다. 채혈 2~3일 전에는 요오드가 함유된 약의 복용을 피하세요.

2.1.3. 검사 일주일 전에 PSA를 연구할 때 전립선 조작을 배제하십시오.

2.1.4. 혈액은 아침에 공복(유백질증, 즉 혈청 혼탁을 방지하기 위해)에 생리적 휴식 조건에서 채취됩니다. 채혈 전 환자에게 15분간 휴식을 취해야 합니다.

2.1.5. 혈액은 의료 시설의 치료실에서 환자가 "앉은" 또는 "누운" 자세로 무균 및 소독 규칙에 따라 척골 정맥에서 채취됩니다. 혈액은 멸균 튜브, 모노벳 주사기 또는 혈액 수집 시스템(Vacutainer®, Vacuette®)에 수집됩니다.

2.1.6. 혈청을 얻기 위해 정맥혈이 완전히 응고될 때까지 정치합니다. 피브린 응고가 형성된 후, 멸균 유리 막대를 사용하여 후자를 벽에서 분리하고 각 샘플에 대해 엄격하게 개별적으로 튜브를 3000rpm에서 15분 동안 원심분리합니다. * .

* Monovet 주사기 및 혈액 수집 시스템(Vacutainer®, Vacuette®)은 사전 조작 없이 원심분리됩니다.

2.1.7. 노란색 상청액(혈청)을 캡이 닫힌 빈 튜브(5ml)에 조심스럽게 피펫팅합니다.

2.2. 면역화학 연구를 위한 혈액 및 혈청 보관 규칙

2.2.1. 에게수준:냉장고(+40C - +80C)에 1일 동안 보관하세요.

2.2.2.혈청피:

4 일 동안 +40C - + 80C 온도의 냉장고에;

-200℃ 냉동실에 2주간 보관합니다.

해동은 1회만 허용됩니다!

주목! 검사 대상은 적혈구 혼합물, 세균 증식, 유미 또는 용혈이 포함되지 않은 혈청입니다. 이러한 징후 중 하나라도 나타나면 혈청이 파괴되고 반복 채혈이 처방됩니다.

2.3. 루푸스항응고인자 검사를 위한 혈액 수집 및 보관 규칙

그리고 응고 연구

2.3.1. 연구 당일 무균 및 소독 규칙을 준수하면서 아침에 공복에 척골 정맥에서 혈액을 채취합니다. 혈액 응고 활성화를 방지하기 위해 정맥 압박은 1분을 초과하지 않아야 합니다. .

2.3.2. 혈액 응고에 영향을 미치는 약물을 복용하는 동안 연구가 처방된 경우, 의뢰서에 이를 명시해야 합니다.

2.3.3. 혈액은 다음을 포함하는 특수 튜브에 수집됩니다. 구연산나트륨, 표시까지. 이 규칙을 준수하지 않으면 혈액/항응고제 비율이 변경되어 결과의 정확성에 부정적인 영향을 미칠 수 있습니다.

2.3.4. 채혈 후 1시간 이내에 튜브를 3000rpm에서 15분간 원심분리해야 합니다.

2.3.5. 플라즈마 보관: +40C - +80C 온도에서 최대 6시간, -200C 온도에서 최대 2주.

2.4. 당화(당화) 헤모글로빈 연구를 위한 혈액 수집 및 저장 규칙

2.4.1. 무균 및 방부제의 규칙을 준수하면서 아침에 공복에 척골 정맥에서 혈액을 채취합니다.

2.4.2. 혈액은 EDTA가 들어 있는 특수 튜브에 수집되어 부드럽게 혼합됩니다. 원심분리기를 사용하지 마십시오!

2.4.3. 채혈 당일 실험실로 배송됩니다.

2.4.4. 보관: -200C에서 최대 2주.

2.5. 산전 선별검사 규칙

2.5.1. 최적의 연구 시기: 임신 1분기 – 임신 10-13주; 제2삼분기 – 임신 16~18주.

2.5.2. 연구를 위해 보낼 때 임산부의 개별 데이터(나이(일/월/년)), 체중, 초음파 결과(CTR, BPR, 태아 수, 초음파에 따른 임신 연령 (주 + 일) 가능한 경우 - 자궁 경부 접힘 크기에 대한 데이터 - NT) 초음파 날짜와 초음파를 수행 한 의사의 이름을 의무적으로 표시합니다. 추가 위험 요인(흡연, 당뇨병, IVF)의 존재, 인종.

2.5.3. 임신 제2삼분기를 선별하기 위해 제1삼분기에 수행된 초음파 데이터를 사용할 수 있습니다.

3. 생체재료의 채취, 보관, 운송에 관한 규칙

세균학 연구를 위해

3.1. 생체 적합 물질은 항균 치료 과정을 적용하기 전 또는 완료 후 일주일 이내에 채취됩니다.

3.2. 시료가 외부 환경으로부터 미생물에 의해 오염되는 것을 방지하기 위해 채취한 생체재료를 표준 멸균 규정에 따라 운반배지가 들어 있는 빈 용기나 시험관에 옮겨 담습니다. 시험관(용기)의 마개를 열거나 닫아서 마개 내부를 멸균 상태로 유지하고 멸균 용기를 오랫동안 열어 두지 마십시오.

3.3. 식별을 위한 생체물질 채취 마이코플라스마 및 우레아플라스마, 트리코모나스, 임균, 비특이적 미생물, 혐기성 박테리아의 배양탄소 수송 매체를 사용하여 브랜드 튜브에서 생산:

다이어그램에 따라 표시된 위치에서 패키지를 엽니다.

시험관을 꺼내서 열고 뚜껑을 버립니다.

프로브를 사용하여 긁기/도말, 생검 샘플을 채취하거나 프로브를 생물학적 체액에 담그십시오.

생체재료가 들어 있는 프로브를 즉시 시험관에 넣습니다(프로브 손잡이는 시험관의 뚜껑입니다).

시험관에 번호를 매기고 방향에 숫자를 표시하십시오.

3.4. 운송 석탄 환경에 투입하기 위한 생물학적 물질의 유형:도말/찰과상, 전립선액, 뇌척수액, 윤활액, 생검.

3.5. 검출용 수송 매체가 포함된 튜브에 생체물질 보관 마이코플라스마 및 우레아플라스마, 비특이적 미생물총이동하는 순간까지 -

하루 안에 실험실로 배송됩니다.

3.6. 검출용 수송 매체가 포함된 튜브에 생체물질 보관 트리코모나스, 임균, 혐기성 세균 배양이동하는 순간까지 - 실온에서.

3.7. 천연 생체재료: 가래, 전립선액, 윤활액비특이적 미생물, 마이코플라스마 및 우레아플라즈마 검출을 위해 1~10ml를 빈 멸균 용기에 수집합니다.

생체재료 채취 전날 또는 당일 오전 11시 이전에 연구실에 통보해야 합니다.

천연생체재료를 운송까지 보관 - 냉장고 칸에 있습니다 (+4ºС - +8ºС).

재료 수집 당일 실험실로 배송됩니다.

3.8. 세균뇨의 정도를 검사하기 위한 소변(평균 아침 분량, 10-20 ml) 외부 생식기를 철저히 배변한 후 뚜껑이 있는 빈 멸균 용기에 수집합니다.

생체재료 채취 전날 또는 당일 오전 11시 이전에 연구실에 통보해야 합니다.

운송까지 생체재료 보관 - 냉장고 칸에 있습니다 (+4ºС - +8ºС).

생체재료 수집 당일 실험실로 배송됩니다.

3.9. 불임에 대한 혈액.

가장 유익한 정보는 온도가 상승하는 동안 채취한 혈액 샘플입니다.

혈액은 2단계 운반 매체(성인용 병, 어린이용 병)를 사용하여 브랜드 병에 수집됩니다. 병의 플라스틱 뚜껑을 조심스럽게 열고 고무마개의 튀어나온 부분을 70% 알코올로 닦아냅니다. 무균 상태에서 주사기로 정맥에서 혈액을 채취하여 고무마개를 통해 병에 주입합니다(성인은 4ml, 어린이는 2ml).

생체재료 채취 전날 또는 당일 오전 11시 이전에 연구실에 통보해야 합니다.

운반될 때까지 혈액을 보관 - 실온에서.

생체재료 수집 당일 실험실로 배송됩니다.

3.10. 모유비특이적 미생물을 확인하기 위해 각 유방에서 별도의 멸균 밀봉 컵으로 채취합니다. 컵에 라벨을 붙입니다: "왼쪽 가슴", "오른쪽 가슴".

생체물질 채취 전 유방을 따뜻한 물과 비누로 씻은 후 깨끗한 수건으로 닦고 70% 에틸알코올 용액을 적신 면봉으로 유두와 유두 부위를 조심스럽게 닦아낸 후 멸균 천으로 건조시킵니다(각각 글랜드는 별도의 면봉으로 처리됩니다). 짜낸 모유의 처음 10-15ml는 분석에 사용되지 않습니다. 각 유방의 두 번째 우유 부분을 ~ 10ml의 양으로 라벨이 붙은 컵에 짜냅니다.

생체재료 채취 전날 또는 당일 오전 11시 이전에 연구실에 통보해야 합니다.

재료 채취 당일 2시간 이내에 연구실로 배송됩니다.

3.11. 이상 세균증에 대한 대변.

검체 채취 전 3일간 음주, 2주간 항생제 복용을 금합니다. 대변은 관장이나 완하제 없이 얻어야 합니다. 변비가 있는 어린이의 경우 자극적인 효과를 위해 비누를 사용할 수 있습니다. 대변은 개별 용기에 수집되어 소독제로 세척됩니다. 멸균숟가락을 사용하여 대변의 평균량 3~5g을 채취하여 멸균용기에 담는다.

생체재료 채취 전날 또는 당일 오전 11시 이전에 연구실에 통보해야 합니다.

운송까지 보관 - 열 보존을 위해 생체재료를 탈지면과 종이로 싸서 용기를 보관하십시오.

생체재료 수집 당일 실험실로 배송됩니다.

4. 생체재료의 채취, 보관, 운송에 관한 규칙

현미경 연구를 위해

4.1. 각 환자로부터 - 2잔(한 잔 - 예비). 모든 유리에 - 3점:질 ( V), 자궁 경관 ( 와 함께), 요도 ( 유). 무광택 표면이 왼쪽, 위쪽 및 왼쪽에서 오른쪽으로 v, c, u가 되도록 스트로크를 적용합니다.

4.2. 유리에 표시된 표시(번호)는 알코올에 용해되어서는 안 됩니다(간단한 연필로 유리의 반투명 부분에 서명할 수 있습니다). 얼룩은 공기 건조(30~60분)로 고정해야 합니다.

4.3. 안경에는 표시를 하고 나란히 접어서 적절한 문구(의료 시설, 환자의 성명, 유리에 있는 번호)와 함께 개별 가방에 포장해야 합니다.

4.4. 패키지와 완료된 추천서는 실험실로 전송됩니다.

5. 생체재료의 채취, 보관, 운송에 관한 규칙

5.1. 연구 전 24시간 동안은 질 세척, 질내 치료, 성교를 피해야 합니다. 월경 중에는 물질을 섭취할 수 없습니다. 가장 유용한 정보는 월경 시작 후 14~20일에 채취한 샘플입니다.

5.2. 양손검사, 각종 진단검사 전, PCR을 위한 자료 채취 전 채취합니다. 질 점막을 사전 처리하지 않고 재료를 채취합니다.

5.3. 질/경부 점막의 긁어낸 부분을 나일론 Cervex-Brush, 주걱 또는 기타 도구를 사용하여 채취하고 유리 위에 고르게 펴서 유리의 한쪽 끝을 깨끗하게 유지합니다(마킹용). 유리당 한 점을 채취하여 다른 예비 유리에 복제합니다(점당 총 2개의 유리). 얼룩은 공기 건조(30~60분)로 고정해야 합니다.

5.4. 안경에는 표시(환자의 번호 및 성명)가 표시되어 있어야 하며, 나란히 접어서 적절한 문구(의료 시설, 환자의 성명, 유리의 번호)와 함께 개별 가방에 포장되어야 합니다.

5.5. 건조된 도말은 실온에서 최대 6일 동안 보관할 수 있습니다.

5.6. 패키지와 완성된 지침(각 지점에는 생체 재료 유형을 나타내는 고유한 방향이 있음)이 실험실로 전송됩니다.

방향대로 안경을 가방에 넣지 마시고, 방향대로 안경을 포장하지 마세요!

지식 기반에서 좋은 작업을 보내는 것은 간단합니다. 아래 양식을 사용하세요

연구와 업무에 지식 기반을 활용하는 학생, 대학원생, 젊은 과학자들은 여러분에게 매우 감사할 것입니다.

게시 날짜 http://www.allbest.ru/

"니즈니 노브고로드 의과대학"

(GBOU SPO 번호 "NMK")

시험

주제: “생체재료의 접수, 라벨링 및 등록 조직”

완전한:

그룹 221-IV 연구실의 학생입니다.

스테파니체프 M.N.

선생님:

벨로바 M.N.

N. 노브고로드 2016

소개

1. 이론적인 부분

1.1 길찾기 등록

1.2 실험실 연구 모드

1.3 임상 실험실 연구용 물질의 보관 및 운송 조건

1.4 적용 범위

1.5 택배로 생체물질을 운송하는 과정의 구성과 택배의 책임

1.6 실험실에서의 생체재료 수용

1.7 생체재료 이송 및 연구실 관련 부서로 의뢰

1.8 운영자의 주문 양식 등록

2. 실무적인 부분

결론

소개

실험실 테스트는 환자의 상태를 나타내는 가장 민감한 지표입니다. 임상 검사실 진단 전문가들은 많은 요인이 검사실 검사 결과에 영향을 미칠 수 있다는 사실을 오랫동안 인식해 왔습니다. 이러한 요소 중에는 올바르게 전달되고 적절하게 설계된 생체 재료 샘플과 그에 수반되는 문서가 있습니다. 그러한 뒷받침 정보(실험실 테스트에 영향을 미치는 요인)가 없으면 임상의는 결과를 잘못 해석하여 환자에게 잘못된 조치를 취할 수 있습니다.

이 테스트의 목적은 생물학적 물질의 문서 접수 및 처리에 대한 규칙을 개정해야 할 필요성에 대한 주의를 환기시키는 것입니다. 정보의 올바른 적용은 불필요한 연구를 줄이고, 비용을 절감하며, 연구 결과에 대한 더 나은 이해로 이어져야 합니다.

표적:

생체재료의 접수, 라벨링, 등록 조직을 연구합니다.

작업:

1. 생체재료의 이용에 관한 연구.

2. 문서 준비.

1. 이론적인 부분

현재 실험실 연구 방법은 질병의 진단과 치료에 핵심적인 역할을 하고 있습니다. 환자를 검사할 때 실험실 진단의 조직적 측면, 실험실 테스트의 정확성과 정확성 보장, 안정적이고 기술적으로 신뢰할 수 있는 분석 방법의 사용 및 연구 품질 관리가 매우 중요합니다.

의료 기관에서는 상당히 광범위한 실험실 방법을 사용하며, 표준화된 일상 기술과 함께 매우 구체적이고 유익한 현대 연구 방법도 사용됩니다.

질병을 진단하기 위한 매우 구체적인 실험실 방법을 의료 실무에 도입하려면 진단 과정의 모든 단계에서 표준화가 필요합니다.

전체 실험실 오류 수 중 분석 전 단계의 오류 비율은 50%~95%입니다. 실험실 연구의 분석 전 단계에서 발생하는 오류는 실험실 연구의 전체 추가 과정을 평가 절하하고 상당한 자금 손실을 초래하며 얻은 결과의 신뢰성이 낮기 때문에 주치의의 눈에 실험실 방법을 불신하게 만듭니다.

모든 유형의 실험실 연구에서 사전 분석 단계는 실제 실험실 분석 이전에 다음과 같이 구성된 일련의 프로세스를 결합합니다.

· 과목의 철저한 준비;

· 생체물질(혈액, 소변 등) 획득;

· 생체재료를 실험실로 운반합니다.

· 실험실에서 생체재료의 일차 처리;

· 실험실에서 생체재료의 유통 및 보관.

분석 전 과정의 이러한 단계의 주요 임무는 연구용으로 사용되는 생체 재료 구성 요소의 안정성(안전성)을 보장하고 품질을 변화시키는 다양한 요인의 영향을 최소화하는 것입니다.

이와 관련하여 분석 전 단계가 고려됩니다.

1.1 길찾기 등록

자료를 가져갈 때 지시사항을 정확하게 작성해야 합니다. 시험관과 함께 제공되는 문서 및 라벨을 혼동해서는 안 됩니다. 구획과 일련번호는 튜브에 표시되어 있습니다. 그룹 및 Rh 소속을 확인하기 위해 혈액이 담긴 시험관에 환자의 성을 추가로 표시합니다.

생체 물질을 채취할 때 분석 방향에서 다음 사항을 표시해야 합니다. (1차 의료 문서 양식에 대한 2007년 9월 28일자 벨로루시 공화국 보건부의 명령 No. 787을 고려한 모든 데이터)

· 환자 데이터 - 성, 이름, 부칭, 생년월일, 성별, 주소, 병력 번호, 진단.

· 분석을 위해 생체물질을 보낸 의사의 이름;

생체재료를 채취한 날짜와 시간

· 전송되는 생체재료에 대한 간략한 설명을 제공합니다(생체재료의 유형 표시), 신고된 생체재료와 일치하지 않는 물질은 검사되지 않습니다(예: 가래 대신 타액, 혈장 대신 혈청).

· 생체재료 수집의 특징(수집 장소 - 혈액, 소변 - 부피, 분량, 수집 시간);

· 단지 "생화학적 혈액 검사"가 아닌 필요한 모든 검사.

분석 의뢰서에는 의사가 서명합니다.

테스트 중복을 피하세요.

1.2 실험실 연구 모드

모든 혈액은 실험실에서 채취한 화학적으로 깨끗한 튜브인 원심분리기로만 공급되어야 합니다. 긴급 분석 모드에서 연구용 혈액은 별도로 전달되어야 하며, 예고 없이 예정된 검사와 함께 테이블 위에 놓지 마십시오. 긴급 테스트를 전달한 부서 직원은 해당 테스트가 실험실 직원에 의해 승인되었는지 확인해야 합니다.

응급검사는 2시간 이내에 실시하며, 응급조치가 필요한 경우 심각한 상태의 환자에 한해 시행됩니다. 긴급 분석을 위해 별도의 실험실 조교와 실험실 진단 의사가 배정됩니다. 긴급 분석 모드로 연구를 수행하려면 더 많은 시약 소비와 전문가 작업 시간이 필요하므로 결과적으로 재정적 비용도 더 커집니다.

현재 긴급분석실에서는 다음과 같은 혈액검사를 긴급하게 실시하고 있습니다.

헤모글로빈 농도 측정

적혈구용적률 계산

· 적혈구 수 계산

· 백혈구수

· 백혈구수

혈소판 수

대기 중 분석은 새로 입원한 환자 또는 환자의 상태가 악화되어 응급 개입이 필요하지 않은 경우 근무일 중에 수행됩니다.

참고: 일반 실험실 값은 공복 샘플을 나타냅니다. 따라서 응급 및 일상 연구 결과의 해석은 일반적인 값과의 단순한 비교로 구성될 수 없습니다.

계획된 연구는 전날 예정된 모든 연구이며, 오전 7시부터 9시까지 연구실에 도착하는 자료입니다. 실행 시간은 최대 6시간이며 경우에 따라 더 긴 분석 절차가 필요합니다.

직원의 실험실 검사는 직원의 건강 검진을 담당하는 의사의 지시에 따라 수행됩니다. 다른 모든 경우에는 검사가 유료로 제공됩니다.

1.3 임상 실험실 연구용 물질의 보관 및 운송 조건

직업적 감염을 예방하기 위해 모든 생물학적 체액은 잠재적인 감염성 물질로 간주되어야 하며 운송, 보관 및 처리 중 처리에 대한 모든 관련 규칙을 준수해야 합니다. 감염성 환자의 생체재료에는 특별한 표시가 있어야 하며 극도의 주의를 기울여 취급해야 합니다. HIV 감염 환자의 모든 생체 재료에는 병력 번호를 의무적으로 표시하는 "코드 120" 방향으로 표시해야 합니다.

생성된 생물학적 체액은 가능한 한 빨리 실험실로 전달되어야 합니다. 포도당과 산염기 상태를 확인해야 하는 경우 혈액을 즉시 실험실로 전달해야 합니다.

운송 및 가공의 모든 단계에서 혈액은 미생물 및 각종 외부 물질에 의한 증발 및 오염을 방지하기 위해 뚜껑을 닫은 채 튜브에 보관해야 합니다.

배송 시 튜브는 뚜껑을 위로 향하게 하여 수직으로 위치해야 합니다. 이렇게 하면 샘플을 보존하고 혈청을 받을 때 혈전 형성을 촉진하고 운송 중 흔들림과 용혈 위험을 줄이는 데 도움이 됩니다.

시험관을 가득 채워서는 안 됩니다. 항응고제 없이 채취한 전혈은 용혈을 방지하기 위해 검사실로 전달하기 전에 냉장 보관해서는 안 됩니다.

원심분리는 생체재료를 채취한 후 1시간 이내에 수행됩니다.

1.4 적용 범위

본 표준운영절차(이하 SOP)는 (기관명) 및 해당 연구실이 소속된 기타 기관의 절차실에서 연구실로 들어오는 생물학적 시료를 접수, 등록하는 절차와 불일치 사항을 식별하고 이를 제거하는 절차를 정의합니다.

이 SOP는 실험실 조교 및 실험실 운영자를 위한 것입니다.

1.5 택배로 생체물질을 운송하는 과정의 구성과 택배의 책임

자동차 내부 디스플레이에 표시되는 냉장고의 온도는 택배사가 "자동차 냉장고 온도 조건 일지" 저널에 기록하며, 이 일지에 택배사는 자신의 성명, 자동차 등록 번호판을 표시합니다. 기관으로 이동하기 직전 생체재료 차량의 출발 시간.

의료 시설에 도착한 택배사는 이 기관의 등록소로 가서 다양한 생체 재료가 담긴 용기를 가져옵니다. 각 용기에는 기관 이름과 생체 재료 유형(혈액, 소변, 대변, 얼룩이 있는 슬라이드, 긁힌 자국)이 포함되어 있습니다. 택배기사는 사진과 같이 기계의 냉장고에 용기를 수평으로 배치합니다.

택배사는 용기의 무결성, 안전성, 자동차 냉장고의 적절한 온도 조건(+4 - +8 o C) 보장 및 기관에서 의료 기관으로 전달되는 생체 재료의 안전에 대한 책임이 있습니다. 실혐실. 이동 중에 택배기사는 차량 내부에 설치된 디스플레이에 표시되는 차량 냉장고의 온도를 모니터링합니다.

1.6 실험실에서의 생체재료 수용

컨테이너를 제거할 때 자동차 냉장고 디스플레이에 표시된 온도는 자동차의 상태 번호에 해당하는 열에 있는 "자동차 냉장고의 온도 조건 일지" 저널에 택배사에 의해 기록됩니다. 또한 동일한 로그에서 운전자는 기관의 생체 물질을 사용하여 자동차 도착 시간을 표시합니다.

택배는 혈액 샘플, 도말 및 긁힌 부분이 담긴 라벨이 붙은 용기를 의료 실험실 조교에게 넘깁니다.

사무실에서는 의료 실험실 조교가 용기 뚜껑을 열고 혈액이 담긴 튜브, 얼룩과 긁힌 자국이 있는 슬라이드, 연구 지침이 담긴 폴더를 제거합니다.

튜브 유형(생화학, 혈액학 및 응고학)과 랙에 표시된 기관 이름에 따라 혈액 튜브를 랙으로 별도로 분류합니다.

1.7 생체재료 이송 및 연구실 관련 부서로 의뢰

사무실에서는 의료 보조 실험실 보조원이 생화학, 면역학, 응고학 연구를 위한 시험관이 담긴 랙을 "생체 물질 이동용"이라고 표시된 용기에 넣고 원심분리를 위해 가져갑니다.

구급대원-실험실 직원은 혈액학 및 PCR 부서에 전화하여 관련 부서의 구급대원-실험실 보조원이 생체재료를 채취하도록 합니다.

다음으로 그는 연구 추천을 등록 운영자에게 전달합니다.

1.8 운영자의 주문 양식 등록

등록 절차:

- 운영자는 지시 양식에 붙여진 스캐너로 바코드를 읽습니다.

- 그런 다음 운영자는 환자의 여권 데이터를 LIS에 입력합니다: 성명, 생년월일, 거주지 주소 및 기타 데이터: 주문 출처(의무 의료 보험, 임의 건강 보험, 현금 지불, 임상 검사), 기관 번호, 부서, 검사, 진단, MES 코드(의료 및 경제 표준)를 지시한 의사의 성명.

- 이후 운영자는 주치의가 처방한 지표를 LIS에 입력하고 생성된 주문을 LIS에 저장합니다.

2. 실무적인 부분

City Clinical Hospital No. 40은 1966년에 개원했으며 현재 병원, 산부인과 병원, 산전 진료소, 아동 및 성인 진료소를 포함하는 니즈니 노브고로드의 유일한 종합 의료 단지를 대표합니다. 전문의의 고급 교육 및 전문 재교육 센터인 니즈니 노브고로드 주립 의학 아카데미(Nizhny Novgorod State Medical Academy)는 개원 이후 병원을 기반으로 운영되고 있는 외과부의 주요 임상 기반입니다. 40번 병원의 기능적 특징은 응급 상황에서 거의 모든 병리학적인 환자를 24시간 내내 수용한다는 것입니다. 구급차는 매일 100명 이상의 환자를 이송합니다.

병원과 그 구조 부서는 환자에게 적시에 지원하고 고품질의 치료를 제공하는 데 필요한 모든 조건을 만들었습니다. 이곳에서는 전통적인 방법을 자신있게 사용하고 개선하며 최신 의료 기술을 적극적으로 도입합니다. 현대 진단 장비는 모든 곳에서 사용되고 있습니다. 지난 2년 동안 의료 현대화 프로그램의 일환으로 병원은 현대 내시경, 검사실 및 초음파 진단 장비를 포함하여 216개 의료 장비를 도입하여 간췌장학, 대장항문학 및 대장항문학에서 보다 복잡한 개입을 수행할 수 있게 되었습니다. 정맥학.

최고의 전문가들이 러시아 및 국제 수준의 전문 세미나, 컨퍼런스, 심포지엄에 적극적으로 참여합니다. 실험실 임상 생체재료

시립병원 제40호는 현대 과학 발전과 기술이 실제로 적용되는 광범위한 임상 기지입니다. 여기에서는 니즈니노브고로드 주립 의과대학 전문가의 고급 교육 및 전문 재교육 센터의 외과부와 오랫동안 공동 작업을 성공적으로 수행해 왔습니다. 조직자인 Igor Leonidovich Rotkov 교수는 거의 모든 병원의 외과 의사가 참석한 외과 학교의 창립자가 되었으며 오늘날에도 축적된 경험을 계속 발전시켜 새로운 개발과 기술을 도입하고 있습니다. 병원을 기반으로 도시 정맥학 센터가 만들어졌습니다. 수십 년 동안 소아외과에는 니즈니 노브고로드 소아과 연구소의 분과로서 소아 위장병학 과학 부서가 있었습니다. 산부인과 병원을 기반으로 의사의 고급 교육과 NSMA 학생 교육을 위한 산부인과 부서가 있습니다. 여기에서는 러시아 여러 지역의 전문가들이 기술을 향상시킵니다. 현직 과학자와 병원 의사의 공동 작업은 그들의 기술 성장에 기여하고 다양한 의학 분야의 혁신을 통해 환자 치료에서 독특한 결과를 얻을 수 있습니다.

시립임상병원 제40호 업무결과를 바탕으로 박사학위논문 9편, 후보논문 29편이 옹호되었습니다. 병원 전문가가 개발한 수술, 진단 및 실용신안 방법에 대해 70개 이상의 저작권 인증서와 특허를 받았습니다.

의사팀의 성과는 2012년 니즈니 노브고로드 시 의학 분야 상을 수상하는 등 높은 평가를 받았습니다. 이 작업은 수술의 가장 시급하고 복잡한 문제 중 하나인 하지의 정맥혈전증 치료, 지난 5년간의 관찰 기간 동안 다음과 같은 상황에서 정맥혈전증 환자에게 응급 및 계획된 수술 치료를 제공하는 데 전념하고 있습니다. 국가 예산 의료 기관 "시립 임상 병원 No. 40"을 기반으로 한 시 정맥학 센터.

병원의 일부인 산부인과 병원은 205개의 병상을 갖추고 있으며 니즈니노브고로드 지역에서 가장 큰 규모입니다. 현재 이곳은 매년 4,500~5,000명의 출산을 받아들이는 지역 주산기 센터 역할을 하고 있습니다. 산부인과 전문의가 수행하는 모든 업무는 유산 및 후기 임신 사례의 감소, 자연분만을 달성하고 신생아의 생존율을 향상시키는 것을 목표로 합니다.

2010년 1월부터 성인 진료소 내에서 지역 수준에서 최고로 인정받는 건강 센터가 성공적으로 운영되고 있습니다. 그의 업무 경험은 전 러시아 포럼 센터장이 "건강한 국가는 러시아 번영의 기초입니다."라고 발표했습니다.

2012년에는 오지의 의료 접근성을 높이기 위해 일반의 진료실을 신설해 성인클리닉 구조 내에서 성공적으로 운영됐다.

의사, 간호사, 실험실 조교, 질서, 기술 직원을 포함하여 천 명 이상의 기관 직원이 열심히 일하고 배려하며 따뜻함을 바탕으로 국가 예산 기관 직원의 특징인 인본주의와 자비의 분위기를 조성합니다. 40호.

인턴십 기간 동안 생체재료를 접수하고 등록하는 전 과정을 마스터하였습니다.

1. 생체재료 및 형태의 접수.

2. 생체재료 연구

3. 얻은 결과를 양식에 기록

4. 테스트 로그에 결과 기록

5. 생체재료의 폐기

결론

생체재료의 접수, 라벨링, 등록 조직에 대한 주요 통제 형태는 주기적인 외부 및 내부 검사입니다. 그러나 이러한 형태의 통제는 효과적이라고 간주될 수 없습니다. 실험실 연구의 이 단계를 통제하는 문제는 오늘날에도 현대 실험실 의학의 가장 심각한 문제 중 하나로 남아 있습니다.

가장 효과적이고 효율적인 단계는 환자의 생물학적 시료를 수집, 운송 및 보관하기 위한 표준 조건을 만드는 것입니다(진공 또는 기타 시스템 사용). 이러한 시스템을 실제로 도입한다고 해서 실험실 연구의 모든 단계에 영향을 미치는 것은 아니며 일반적으로 실험실 작업 조직을 다른 수준으로 끌어올립니다. 이들의 사용은 조직을 촉진하고 분석 전 단계의 표준화를 크게 촉진할 뿐만 아니라 현대 실험실 시스템의 구현에 필요한 조건을 생성합니다. 분석기를 사용할 수 있는 경우 기본 튜브로 사용할 수 있으며 이는 실험실 연구의 분석 단계를 크게 단순화합니다.

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근본적으로 새로운 약물과 이전에 사용되지 않은 약물에 대한 임상시험을 수행하기 위한 법적 근거. 세계의사협회 헬싱키 선언에 명시된 임상 연구의 윤리적, 법적 원칙.

프레젠테이션, 2013년 3월 25일에 추가됨


미생물 실험실의 작업 단계와 각 작업에 필요한 시간. 규범적인 문서. 미생물학 연구를 위한 생물학적 물질 시료의 수집 및 전달에 대한 일반 요구 사항. 테스트 결과의 해석.

프레젠테이션, 2016년 4월 26일에 추가됨


카자흐스탄 공화국 보건부 명령의 일반 조항 "임상 연구 수행 및/또는 약리학 및 의약품 테스트 지침 승인 시." 임상 연구의 윤리적 평가 원칙.

프레젠테이션, 2014년 12월 22일에 추가됨


정신분열증의 주요 증상을 숙지합니다. 환자의 정신적, 신체적, 신경학적 상태를 분석합니다. 정신질환 연구를 위한 임상적 방법의 고찰. 실험실 테스트의 일반적인 특성.

활동적인

MU 4.2.2039-05

방법론적 지침

4.2. 제어 방법. 생물학적 및 미생물학적 요인

생체재료를 미생물로 수집 및 운반하는 기술
실험실

도입일 2006-07-01

2. 2005년 10월 6일 소비자 권리 보호 및 인간 복지 감독을 위한 연방 서비스 산하 국가 위생 및 위생 표준 위원회의 승인을 권장합니다(프로토콜 번호 3).

3. 2005년 12월 23일 러시아 연방 최고 위생 의사 G. G. Onishchenko 소비자 권리 보호 및 인간 복지 감독을 위한 연방 서비스 책임자가 승인하고 발효했습니다.

5. 처음으로 소개되었습니다.

1 사용 영역

1 사용 영역

1.1. 이 지침은 실험실 연구 결과의 질을 향상하고 방역 및 예방 조치를 마련하고 의료진과 환자의 병원 감염을 예방하기 위해 생물학적 물질을 수집하고 미생물 실험실로 운송하는 규칙을 명시합니다.

1.2. 이 지침은 소비자 권리 보호 및 인간 복지에 대한 감시를 위한 연방 서비스 기관 및 조직에서 사용하기 위한 것이며, 보건 당국 및 조직에서도 사용할 수 있습니다.

2. 일반 조항

2.1. 감염원 식별에 대한 신뢰할 수 있는 데이터를 얻는 것은 전염병 감시 중에 인구의 감염 수준을 평가하는 전염병 방지 및 예방 조치를 시기적절하고 효과적으로 구성하는 데 필요합니다.

2.2. 생물학적 물질을 수집하고 미생물학 실험실로 운반하기 위한 개발된 기술은 분석 전 오류 수준을 줄이고 결과를 객관화하는 실험실의 품질을 향상시킬 것입니다.

2.4. 이 지침은 실험실에서 분리 및 식별된 감염원의 항균제 내성에 대한 역학적 감시를 수행할 때 사용할 수 있으며, 지역, 지역 및 국가 수준에서 내성 예방, 통제 및 억제 분야의 항균제 사용 및 조치를 최적화할 수 있습니다.

3. 미생물 연구를 위한 생물학적 물질 시료 수집에 대한 일반 요건

3.1. 생체재료 샘플을 수집하여 실험실로 전달할 때 의료진과 환자를 감염으로부터 보호하려면 다음이 필요합니다.

샘플을 수집하고 전달할 때 접시의 외부 표면을 오염시키지 마십시오.

첨부된 문서(지시사항)를 오염시키지 마십시오.

생체재료 시료를 수집하여 실험실로 전달하는 의료 종사자의 손과 생체재료 시료의 직접적인 접촉을 최소화합니다.

시료를 수집, 보관 및 전달하기 위해 규정된 방식으로 멸균된 일회용 용기 또는 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 용기(용기)를 사용합니다.

별도의 둥지가 있는 캐리어 또는 패키지로 샘플을 운송합니다.

침습적 조치를 시행하는 동안 환자의 감염을 예방하기 위해 무균 조건을 관찰합니다.

멸균된 일회용 또는 유리 용기에 샘플을 수집합니다(생체 재료로 오염되지 않았으며 균열, 부서진 가장자리 및 기타 결함으로 인해 손상되지 않음)

3.2. 생체재료 시료는 다음과 같이 수집해야 합니다.

항균 요법을 시작하기 전, 이것이 가능하지 않은 경우 - 약물을 반복적으로 투여 (복용)하기 직전;

분석을 수행하는 데 필요한 수량(무게, 부피)이 있기 때문입니다. 연구에 필요한 생체 재료의 양이 부족하면 잘못된 결과가 발생합니다.

정상적인 미생물로 인한 물질의 오염을 최소화합니다. 그 존재는 예를 들어 가래 연구, 코 샘플, 인두 (목), 생식기 등에서 얻은 결과를 잘못 해석하게 만듭니다.

3.3. 샘플을 수집할 때 실험실에서 생체재료가 담긴 용기를 열 때 에어로졸이 형성되지 않는지 확인하십시오. 혈액 및 기타 체액 샘플은 거품이 형성되지 않고 주사기에서 건조 및/또는 용기로 조심스럽게 옮겨집니다. 배지(항응고제)로 채워져 있습니다.

3.4. 연구 방향에는 환자의 성, 이름, 후원자가 표시됩니다. 생년월일; 그가 속한 부서; 병력 번호(외래 환자 카드) 진단; 연구 및 연구 목적을 위해 보낸 자료; 자료 수집 날짜 및 시간(시간) 항생제 및/또는 면역요법을 배경으로 검체를 채취하는 경우 항균(면역) 약물 테스트용 샘플을 보내는 주치의(컨설턴트)의 성, 이름, 부칭. 부검을 통해 확보한 생체재료를 보낼 때 환자가 사망한 부서도 함께 명시한다.

3.5. 특히 침습적 방법을 사용하는 경우 시료를 수집하기 전에 임상 진단을 객관화하고 진행 중이거나 계획된 치료를 평가할 목적으로 이러한 특정 유형의 생체 적합 물질의 중요성뿐만 아니라 환자에 대한 위험과 이익의 가능성을 고려합니다. 측정.

4. 생체재료 샘플을 미생물학 실험실로 전달하기 위한 일반 요구사항

4.1. 수집된 모든 샘플은 수령 후 즉시 미생물 실험실로 보내집니다. 단, 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 운송 매체가 포함된 용기를 규정된 방식으로 사용하는 경우는 예외입니다.

이는 다음과 같은 경우에 필요합니다.

병원균의 생존력을 유지하고 특별한 재배 조건이 필요한 미생물(헤모필루스 등)을 분리할 수 있는 가능성을 유지합니다.

빠르게 성장하는 활성 미생물의 과도한 성장을 방지합니다.

샘플 내 미생물 연합이 존재하는 경우 분리물의 초기 농도 비율을 유지하는 단계;

항균 활성이 있을 수 있는 국소적으로 사용되는 일부 방부제와 시료의 접촉 시간을 줄입니다.

감염성 염증성 질환의 임상 진단의 객관화 및 치료 결과 평가.

4.2. 생체재료를 실험실에 전달하는 데 걸리는 시간을 늘리기 위해 대체 방법을 사용할 수 있습니다.

검체는 아래의 경우를 제외하고 2~8℃의 온도에서 냉장고에 보관한다.

4.2.1. 검체를 규정된 방식으로 사용하도록 승인된 특수 운반 용기(이송 시스템)에 보관하는 경우, 이는 한천 또는 액체 운반 매체가 포함된 멸균 일회용 튜브와 마개에 장착되고 튜브와 함께 멸균 포장된 면봉 탐침입니다. . 이러한 용기에서 샘플은 실온(18~20°C)에서 보관됩니다. 활성탄이 포함되거나 포함되지 않은 특수 밀도가 높은 운송 매체를 사용하면 48~72시간 동안 특수 배양 조건이 필요한 미생물의 생존력을 보존할 수 있습니다.

혐기성균 및 분변균에 대한 시험에는 규정된 방법으로 사용하도록 승인된 수송 배지가 담긴 특수 용기, 캄필로박터 및 헬리코박터 분리용 배지가 담긴 시험관을 사용하십시오. 이러한 환경은 미생물을 위한 무생물적 환경을 조성하여 미생물의 신진대사를 감소시키고 성장을 억제하며 건조 및 노폐물 축적을 방지합니다.

액체 매질에 수집된 각 샘플은 매질과 완전히 혼합됩니다.

4.2.2. 혈액을 국물에서 배양한 후 샘플을 얻은 후 35-37°C 온도의 항온조에 보관합니다.

2단계 환경에서 후속 연구를 위해 샘플을 특수 용기에 수집하는 경우 실온(18~20°C)에서 보관해야 합니다.

4.2.3. 온도에 민감한 미생물(Neisseria sp.)이 존재할 가능성이 있는 경우 샘플을 실온(18-20°C)에 보관합니다.

4.3. 호기성 및 조건혐기성 존재 여부를 테스트한 샘플을 운반하려면 다음을 사용하십시오.

면봉 탐침(튜브)이 내장된 일회용 멸균 건조 튜브 또는 운송 매체가 담긴 용기로서 러시아 연방에서 규정된 방식으로 이러한 목적으로 사용하도록 승인되었습니다. 실험실에서 준비된 면봉 탐침이 내장되어 있고 가스 투과성 마개로 밀봉된 멸균 유리관을 사용할 수 있습니다.

스크류 캡이 있는 일회용 멸균 용기(가스 투과성 마개가 있는 유리는 허용됨) - 소변, 가래, 대변, 기관지 폐포 세척액, 생검(조직 조각) 재료 샘플 수집용

스크류 캡 또는 유리관이 있는 멸균 일회용 - 멸균 액체, 배액 또는 긁힘에서 분리된 기관지 폐포 세척액 수집용.

멸균 페트리 접시 - 모발 샘플을 수집하거나 접시 바닥에 표시가 있는 긁힌 부분을 운반하기 위해 사용됩니다.

특수 멸균 비인두 및 비뇨생식기 탐침 - 알루미늄 축(축 직경 - 0.9mm)과 팁에 작은 면봉 또는 비스코스 면봉(탐폰 직경 - 2.5mm)이 있는 탐폰, 멸균 일회용 유리 튜브를 밀봉하는 마개에 장착 - 샘플용 B. pertusis의 경우 비인두에서, 남성의 경우 요도에서 채취됩니다.

4.4. 혐기성 미생물의 존재 여부를 테스트한 샘플을 운반하기 위해 특수 운반 매체가 포함된 용기와 티오글리콜레이트 매체가 포함된 시험관을 사용합니다. 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 캄필로박터 및 헬리코박터 분리용 배지가 포함된 시험관. 액체 매질에 수집된 시료를 액체 매질과 완전히 혼합합니다. 샘플을 확보하려면 다음 방법을 권장합니다.

충치를 적극적으로 흡인하는 데 사용되는 배수 배출물은 2-4ml의 단단한 피스톤이 있는 멸균 주사기로 흡입됩니다. 멸균 면봉으로 덮인 멸균 바늘을 채워진 주사기에 놓고 주사기에서 과도한 공기를 제거합니다. 면봉을 소독액에 버립니다. 바늘 끝을 멸균 고무 마개에 삽입하고 이 형태로 재료가 담긴 주사기를 실험실로 전달합니다.

구멍을 뚫어 얻은 감염 및 충치의 내용물은 단단한 피스톤이있는 2, 5, 10ml 주사기를 사용하여 2-4ml의 부피로 수집됩니다. 바늘을 멸균 면봉으로 덮어 주사기에서 과도한 공기를 제거한 다음 소독액에 넣습니다. 70% 에틸 알코올을 적신 면봉으로 바늘을 닦아서 바늘을 소독합니다. 밀봉하기 위해 바늘 끝을 멸균 고무 마개에 삽입하고 이 형태로 재료가 담긴 주사기를 실험실로 전달합니다.

많은 양의 물질(3ml 이상)을 수집할 때 혐기성 박테리아는 실온(18-20°C)에서 24시간 동안 생존할 수 있습니다.

분비물이 몇 방울만 있는 경우 수령 후 즉시 주사기에서 운반 매체가 담긴 작은 용기나 시험관으로 옮깁니다(이송 매체가 담긴 용기는 전날 실험실에서 수령합니다).

혐기성 감염이 의심되는 경우, 조직 조각(생검 재료)을 나사 캡이 있는 멸균 일회용 용기(뚜껑이 갈아진 유리 용기에 허용됨)에 수집하여 즉시 실험실로 전달합니다.

4.5. 바이러스 존재 여부를 테스트한 샘플을 운반하기 위해 액체 배지가 담긴 특수 용기를 사용하여 바이러스를 보존합니다.

5. 다양한 종류의 생체재료 시료 및 환자 주변 환경

1 번 테이블

샘플을 실험실로 운반하는 데 사용되는 유리 제품

임상자료의 출처와 종류	샘플 배송에 사용되는 제품
	혈액 세포를 파괴하는 항생제 중화제 및 시약이 포함되거나 포함되지 않은 배지가 포함된 특수 운송 용기로서 러시아 연방에서 규정된 방식으로 이러한 목적으로 사용하도록 승인되었습니다. 병에 담긴 2상 매체
중추 신경계
분비액	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 튜브; 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개가 달린 멸균 유리관
뇌농양용 소재 및 중추신경계 염증 과정용 생검 소재	멸균된 고무마개에 바늘이 삽입된 주사기; 멸균 고무 마개로 막힌 티오글리콜산염 배지가 담긴 시험관; 혐기성 미생물 보존용 매체가 포함된 운송 컨테이너
하부 호흡기
폐 및 기관의 생검 재료; 자연적으로 객담되고 유도된 가래; 기관지에서 긁어내기	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기(가래 수집용) 실험실에서 준비된 멸균 유리 용기
기관 흡인물, 기관지-폐포 세척, 기관지 세척	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 가래 수집 용기; 단단히 밀봉된 멸균 유리관
경기관 및 폐 흡인	혐기성 미생물을 매체로 하는 특수 운송 컨테이너 멸균된 고무 마개에 바늘이 삽입된 주사기; 티오글리콜레이트 배지가 담긴 용기; 스크류 캡이 달린 멸균 일회용 플라스틱 용기; 단단히 밀봉된 튜브
상부 호흡기
코, 목, 비인두, 외이의 면봉 채취	멸균 건조 튜브(튜저)에 장착된 멸균 일회용 면봉 프로브 또는 적절한 배지가 담긴 운반 용기, 바이러스 수송선; 실험실에 설치된 멸균 유리 제품
비강 세척, 비인두 흡인	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기; 바이러스 수송선
고실천자로 얻은 체액, 바늘 흡인으로 얻은 부비동 흡인물	70% 에틸알코올을 적신 면봉을 이용하여 조작 후 소독한 바늘이 달린 주사기를 멸균 고무마개에 꽂아 놓은 것; 주사기의 물질을 멸균된 일회용 또는 유리 튜브 또는 혐기성 미생물 운반용 매체가 포함된 특수 용기로 옮길 수 있습니다.
코, 인두, 귀 수술 중 얻은 조직	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기; 멸균 고무 마개로 단단히 밀봉된 티오글리콜레이트 또는 기타 운반 매체가 들어 있는 시험관; 단단히 닫힌 멸균 일회용 플라스틱 또는 유리관
눈꼬리 결막에서 긁힌 것	멸균된 그리스가 없는 유리 슬라이드에 번짐; 배지와 함께 특수 운반 용기에 넣거나 영양 배지에 접종하는 물질
안내액	멸균된 그리스가 없는 유리 슬라이드에 번짐; 혐기성 미생물용 배지 또는 멸균 고무 마개에 삽입된 70% 에틸 알코올로 사전 소독된 바늘이 있는 주사기와 함께 특수 배송 컨테이너에 담긴 물질
궤양의 경우 눈꺼풀 가장자리에서 하부 전이 주름의 점막에서 멸균 유리 막대 또는 멸균 면봉으로 배출 - 각 결막염의 경우 각막에서 (마취 후) -에서 눈꺼풀의 모서리	검체 채취에 사용되는 면봉 탐침 또는 멸균 유리 막대가 설치된 멸균 일회용 또는 설탕 국물이 담긴 유리관; 바이러스 환경을 갖춘 특수 운송 컨테이너
눈물주머니의 비밀	멸균 건조관(튜저) 또는 유리관에 장착된 일회용 멸균 면봉 프로브
비뇨생식기계
중간 정도의 소변이 자유롭게 흐르는 경우; 인공 방광을 만드는 데 사용되는 회장관에서; 중환자실 환자의 카테터에서. 방광 플러시. 양측 요도 카테터 삽입 중에 얻은 샘플	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 소변 수집 용기 또는 캡이 있는 멸균 일회용 튜브; 또는 특별한 일회용 소변 수집 튜브. 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개가 달린 멸균 유리관을 사용할 경우 마개에 물질이 담기지 않도록 주의하십시오(시료량 10~20ml).
치골상부 흡인으로 얻은 샘플	바늘이 없고 멸균 고무 마개로 막혀 있는 멸균 주사기; 미리 70% 에틸알코올로 소독하고 고무마개에 삽입한 바늘이 달린 멸균 주사기
여성 생식기의 물질
체액: 양수, 나팔관, 바르톨린	혐기성 미생물을 위한 배지가 포함된 특수 운송 컨테이너; 멸균 고무 마개로 막혀 있고 바늘이 없는 주사기; 70% 알코올로 처리된 바늘이 있고 멸균 고무 마개에 삽입된 주사기(샘플 용량 1-2ml)
자궁 경관, 요도, 질의 샘플	멸균 건조 시험관(튜저) 또는 특수 매체가 담긴 운반 용기에 장착된 일회용 멸균 프로브 탐폰 멸균 유리관의 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개에 장착된 면봉 프로브. 세균성 성병 및 바이러스 연구를 위해 준비된 도말이 있는 슬라이드. 임균을 48시간 이상 보존하기 위한 활성탄 함유 수송 매체가 포함된 튜브
자궁내막의 물질 샘플	스크류 캡이나 시험관이 달린 멸균된 일회용 용기 또는 혐기성 미생물을 위한 배지가 담긴 운반용기 멸균 유리 제품
외부 생식기 재료	바늘이 없고 멸균 고무 마개로 막혀 있는 멸균 주사기; T. pallidum을 결정하기 위해 커버슬립으로 덮인 도말이 있는 슬라이드; 멸균된 일회용 튜브(튜브) 또는 유리관에 장착된 면봉 프로브; 임균 보존을 위한 활성탄이 함유된 배지와 바이러스 및 클라미디아 운반 용기가 포함된 특수 운반 튜브; 다른 성병을 탐지하기 위해 유리 슬라이드에 도말
남성 생식기의 물질
요도 면봉	멸균된 일회용(튜브) 또는 유리관에 장착된 알루미늄 축의 탐침 탐폰(요도 탐침 탐폰); 임균 보존을 위한 활성탄이 함유된 배지와 바이러스 및 클라미디아 수송 용기가 포함된 특수 수송 튜브; 다른 성병을 탐지하기 위해 유리 슬라이드에 도말
사정하다, 정자	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기; 멸균 튜브 또는 튜브, 일회용 또는 유리
부고환염의 부고환의 물질	혐기성 미생물용 배지가 들어 있는 특수 선적 컨테이너 또는 티오글리콜레이트 배지가 들어 있는 컨테이너 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기 또는 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개가 달린 멸균 유리관
음경 병변	바늘이 없고 멸균된 고무 마개로 막혀 있는 주사기; 커버슬립으로 덮인 T. pallidum이 묻어 있는 슬라이드; 멸균된 일회용 튜브(튜브) 또는 유리관에 장착된 면봉 프로브; 바이러스 및 클라미디아용 선적 컨테이너; 기타 성병을 탐지하기 위한 면봉
임질 의심 물질
항문, 자궁 경관, 요도, 질의 얼룩	멸균된 일회용(튜브저) 또는 유리관에 장착된 프로브-탐폰; 임균을 48시간 이상 보존하기 위한 활성탄 매체가 포함된 특수 수송 튜브
위장관
구강	멸균된 일회용(튜브저) 또는 유리관에 장착된 프로브-탐폰; 구강액 수집을 위한 멸균 일회용 또는 유리 용기
위세척액 또는 위세척액; 십이지장 흡인물; 구불창자경 검사 중에 얻은 샘플; 직장 생검 재료	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기; 가래 수집용 특수 멸균 용기; 멸균 유리 용기; 흡인 - 바늘이 달린 멸균 주사기에 미리 소독하고 멸균 고무 마개에 삽입합니다.
직장 면봉	멸균 건조 시험관(튜저)에 장착된 일회용 멸균 탐폰; 또는 특수 운반 매체가 포함된 멸균 튜브; 멸균 유리관의 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개에 장착된 스테인리스 재질의 탐침 탐폰
장 감염("disgroup"), 헬리코박터, 캄필로박터 존재에 대한 대변	글리세린이 함유된 식염수 용액에 면봉이 들어 있는 멸균 튜브; Campylobacter sp.를 분리하기 위한 활성탄이 포함되거나 포함되지 않은 특수 배지가 포함된 분변 샘플의 혐기성 미생물용 배지가 포함된 운송 용기. 및 헬리코박터 sp.; 건조하고 멸균된 일회용 튜브(튜저)에 담긴 탐폰; 티타늄, 강철, 알루미늄으로 만든 금속 와이어에 면봉 프로브가 장착된 멸균 유리관. 나무 축이 있는 탐폰을 사용하는 것은 허용되지 않습니다.
미생물의 일반 및 종 구성에 따른 이상 세균 증 존재에 대한 대변 ( "식물상")	Campylobacter sp.의 분리를 위한 활성탄 배지가 있거나 없는 분변 샘플의 혐기성 미생물에 대한 배지가 포함된 특수 운송 용기. 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 Helicobacter sp. 멸균 일회용 또는 유리 튜브에 글리세린이 함유된 식염수 용액이 담긴 시험관에 탐폰 탐폰을 넣습니다. 스크류 캡이 달린 특수 일회용 멸균 용기; 실험실 장착 유리 용기
분리되고 확인된 미생물의 정량적 설명을 통한 이상세균증 존재에 대한 대변("이상세균증용")	물질을 수집하고 배양용 샘플을 채취하기 위한 나사 캡과 주걱이 있는 특수 멸균 일회용 용기(표준 중량 포함) 실험실에 장착된 특수 멸균 유리 용기
피부 및 피하 조직
궤양, 결절(결절이 두꺼워짐), 얕은 표면 상처(화농성, 화상); 깊은 상처나 농양, 뼈	나사형 캡이 있는 특수 멸균 일회용 용기; 마개가 있는 멸균 튜브, 일회용 또는 유리, 5 ml; 혐기성 미생물을 위한 특수 매체가 담긴 용기
피하 및 연조직의 삼출물; 연조직 흡인	바늘이 없고 멸균 고무 마개로 막혀 있는 멸균 주사기; 미리 70% 에틸알코올로 소독하고 고무마개에 꽂아 놓은 바늘 달린 주사기
혈액, 뇌척수액, 소변을 제외한 멸균 체액(위 참조)
액체
흉막, 복막, 복수, 관절, 윤활막	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기; 바늘이 없거나 바늘이 있는 폐쇄형 주사기로 미리 70% 에틸알코올로 소독하고 멸균 고무마개에 삽입한 주사기
PCR 진단용 생체재료
피; 기타 체액	항응고제가 포함된 멸균되고 일회용이며 마개가 있는 1.5ml 튜브입니다. 튜브를 3~5회 뒤집어 검체와 항응고제를 혼합합니다. 실험실로 배송 - 오토클레이브에서 멸균할 수 있는 재료로 만들어진 랙에 담겨 있음
생검 재료; 긁힌 자국; 가래 및 기타 유형의 생체재료	멸균 건조된 일회용 Eppendorf 튜브 및 기타 유사한 튜브. 실험실로 배송 - 오토클레이브에서 멸균할 수 있는 재료로 만들어진 특수 랙에 담겨 있음
환자의 환경 샘플
공기	조밀한 영양 배지가 포함된 멸균 페트리 접시, 일회용(=90mm) 또는 유리(=100mm). 특수 운반 용기에 담아 실험실로 배송
환자 주변 환경 물체의 세척
불임 여부를 확인하기 위한 테스트
수집 부서의 혈액 및 혈액 성분	준비된 재료가 담긴 용기는 특수 운반 용기에 담겨 실험실로 전달됩니다.
의료 기기, 중환자실, 마취과, 수술실에서 사용되는 장비 호스의 세척 의료진의 손; 리넨	투명하고 무색의 액체 매질이 들어 있는 투명한 튜브에 장착된 멸균 면봉 프로브입니다. 샘플은 오토클레이브에서 멸균할 수 있는 재료로 만들어진 랙에 담겨 실험실로 전달됩니다.
수술 재료: 나무 축에 탐폰, 냅킨, 투룬다, 면봉	3~5개의 멸균 유리구슬이 포함된 투명한 무색 액체 매질이 들어 있는 마개가 달린 멸균 투명 시험관입니다. 샘플은 오토클레이브에서 멸균할 수 있는 재료로 만들어진 랙에 담겨 실험실로 전달됩니다.
봉합사 재료 : 요오드 알코올 용액에 수술실에 보관된 장선	중화액(차아황산나트륨)을 넣은 멸균 시험관(마개 달린 병)
수술실 내 알코올 용액에 보관된 실크, 나일론, 모노머 합성사	세척액으로 멸균 증류수를 함유한 마개가 달린 멸균 시험관. 봉합사 재료 샘플은 오토클레이브에서 멸균되는 랙에 담겨 실험실로 전달됩니다.
환자의 수술 부위 세척	밭을 처리하기 전: 투명한 액체 영양배지로 채워진 투명한 튜브에 넣습니다. 현장 처리 후: 중화제 용액(차아황산나트륨)이 들어 있는 멸균 시험관(마개가 달린 병). 재료는 오토클레이브에서 멸균되는 랙에 담겨 실험실로 전달됩니다.
항감염 방어체계의 면역학적 인자를 확인하기 위한 검사 (신체의 항감염 저항 시스템 - SAIR)
체액성 보호 인자를 결정하기 위한 혈액 및 기타 체액	일회용 주사기-시험관(진공기); 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 튜브; 멸균 고무, 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개가 달린 멸균 유리 튜브. 샘플은 오토클레이브에서 멸균할 수 있는 재료로 만들어진 특수 랙을 통해 실험실로 전달됩니다. 면 거즈 마개가 달린 유리 시험관을 사용할 경우 운반 중에 담그지 마십시오.
세포 보호 인자를 결정하기 위한 혈액 및 기타 체액	스크류 캡이 있는 멸균 일회용 튜브; 멸균 고무 마개로 단단히 밀봉된 멸균 유리관. 항응고제가 함유된 일회용 튜브로 원심분리가 가능합니다. 실험실로의 배송은 오토클레이브에서 멸균되는 재료로 만들어진 특수 랙에서 수행됩니다.
박테리아 및 바이러스 항원을 확인하기 위한 도말 검사(예: 성병이 의심되는 경우)	멸균된 탈지 유리 슬라이드; T. pallidum의 경우 슬라이드를 커버슬립으로 덮어야 합니다. 실험실로의 배송은 일회용 용기 또는 멸균 일회용 또는 특수 용기에 담긴 유리 페트리 접시에 담아 수행됩니다.

메모.고름, 체액, 조직 검체는 나사형 캡이 달린 특수 멸균 일회용 용기에 담아 실험실로 운반해야 합니다. 프로브-샘플 - 샘플을 채취한 후 즉시 재료를 실험실로 전달할 수 없는 경우 멸균 일회용 튜브(튜브) 또는 운반 매체가 담긴 용기에서 건조합니다. 이러한 목적으로 다음을 포함한 전송 미디어를 사용할 수 있습니다. 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 사용하도록 승인된 멸균 면봉 탐침과 함께 포장된 일회용 튜브에 들어 있습니다. 탐침 면봉은 면봉 자체(면 거즈, 면, 비스코스, 데이크론), 탐침 면봉 축(목재, 플라스틱, 스테인리스 금속 - 티타늄, 강철, 알루미늄) 및 고밀도 한천 배지: 혐기성 미생물을 위한 석탄 유무.


예를 들어 Clostridium perfringens, Bacteroides fragilis와 같은 임상적으로 중요한 많은 혐기성 균은 산소 존재에 매우 잘 견디며 대량의 고름, 체액 샘플 및 신체 조직뿐만 아니라 특수 운송 또는 면봉 탐침에 잘 보존됩니다. 티오글리콜레이트 미디어.

산소에 더 민감한 것(예: 푸소박테리아)도 생물학적 시료에 잘 보존되어 있으며, 시료를 채취한 후 2~3시간 이내에 접종하면 전달 방법에 특별한 주의가 필요하지 않습니다. 특별한 배양 조건이 필요한 혐기성 미생물은 특수 수송 배지 또는 티오글리콜레이트가 들어 있는 용기를 제외하고, 혐기성 미생물 전달용이 아닌 배지가 들어 있는 수송 용기의 면봉 탐침에서 생존할 수 없습니다.

동시에, 이러한 미생물은 대부분의 실제 실험실에서 호기성 균과 조건 혐기성 균의 분리 및 식별을 위한 물질이 뿌려진 접시를 배양하는 기간보다 5~7일 더 오래 자랍니다. 이러한 이유로 일반 실제 실험실에서는 배지가 포함된 특수 운송 혐기성 용기를 사용하여 혐기성 미생물의 존재 여부를 정기적으로 테스트하는 것이 비현실적이며 티오글리콜레이트 배지가 포함된 튜브로 제한할 수 있습니다.

샘플을 수집하고 운송하려면 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 사용하도록 승인된 매체, 용기, 도구 및 재료를 사용하십시오.

6. 미생물학 연구를 위한 다양한 유형의 생물학적 물질 시료를 확보하기 위한 규칙 및 기술

침습적 방법을 사용해야 하는 모든 검체는 의사가 환자에게서 채취하는 것이 좋습니다(절차 간호사가 채취할 수 있는 혈액 검체는 제외).

개방된 수술 표면에서 면봉 탐침을 사용하여 물질을 수집해야 하거나 기타 침습적 개입의 경우, 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 국제 안전 수준이 최소한 Class IIA인 기성 면봉 탐침을 사용하는 것이 허용됩니다. 규정된 방식으로 러시아 연방에서 목적을 달성합니다.

6.1. 혈액 샘플

혈액 내 생물학적 물질(균혈증, 바이러스혈증 등)의 존재를 확인하기 위한 검체는 말초 정맥(보통 팔꿈치 정맥), 동맥 또는 신생아의 발뒤꿈치에서 정맥 천자를 통해 채취됩니다.

유치 정맥 또는 동맥 내 카테터에서 검체를 채취하는 것은 카테터 관련 감염이 의심되거나 정맥 천자를 통해 채취할 가능성이 있는 경우에만 허용됩니다.

6.1.1. 급성 패혈증, 수막염, 골수염, 관절염, 치료되지 않은 급성 세균성 폐렴 및 신우신염의 경우, 항균 치료를 시작하기 전에 두 개의 혈관 또는 혈관의 두 부분에서 2개의 검체를 채취합니다.

6.1.2. 순환 내 병원체 농도가 낮을 ​​때(10-30 CFU/ml) 심내막염 및 느린 패혈증이 의심되는 경우:

급성 과정이 있는 경우, 체온이 상승하는 첫 1-2시간 동안(최고 온도가 아님!) 그리고 치료 시작 전 혈관의 두 부분(다른 혈관)에서 2개의 샘플을 수집합니다.

아급성 또는 느린 경과의 경우 첫날에 15분 이상의 간격으로 3개의 검체를 수집합니다. 모든 샘플이 음성인 경우 파종 후 2일째에 3개를 더 수집합니다.

항생제를 투여받는 심내막염 환자의 경우 치료의 긍정적인 임상 역학을 통해 3일마다 2개의 별도 샘플을 수집합니다.

"감염성 심내막염"의 임상 진단을 확인하기 위해 미생물 분석을 위해 환자로부터 필요한 수의 혈액 샘플을 얻는 것이 불가능하거나 배양 결과가 음성인 경우 혈액 샘플을 보내 신체 방어의 면역학적 요인을 연구합니다. 시스템(항감염 저항 시스템 - SAIR); 실험실로의 전달은 실험실에서 전날 받은 캡(마개)이 있는 멸균 유리 또는 일회용 시험관에서 수행됩니다.

환자가 선천성 심장 질환(CHD)을 앓고 있는 경우 CHD는 감염성 심내막염의 전구 증상이며 이러한 환자에 대한 검사 알고리즘에는 CAIR의 면역학적 요인 결정이 포함된다는 점을 기억해야 합니다.

6.1.3. 치료에 항생제가 포함된 환자의 경우 48시간 이내에 6개의 검체를 수집합니다. 샘플은 다음 약물 투여(복용) 직전에 수집되어야 합니다.

6.1.4. 환자에게 원인을 알 수 없는 열이 있는 경우 처음에는 서로 다른 혈관(혈관의 두 부분)에서 2개의 검체를 채취한 다음 24~36시간 후에 체온 상승을 배경으로 2개의 검체를 더 채취합니다. 최고 기온에!).

6.1.5. 혈액 샘플을 채취하는 기술. 배양을 위한 혈액 샘플은 환자의 병상이나 치료실에서 2명이 수집합니다.

샘플을 얻으려면 다음을 수행해야 합니다.

천자를 위해 선택한 혈관 위의 피부 부위를 소독하십시오. 70% 에틸 알코올을 적신 면봉으로 피부를 치료한 다음 1-2% 요오드 용액 또는 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 기타 소독제를 적신 다른 면봉으로 치료하십시오. 규정된 방법으로 중앙에서 시작하여 30초 동안 원을 그리며;

치료 부위가 마를 때까지 기다리십시오. 바늘을 삽입하기 전에 피부를 치료한 후 혈관을 촉진하는 것은 허용되지 않습니다.

이중 매체가 있는 유리병으로 작업할 때: 멸균 주사기를 사용하여 성인의 혈액 10ml, 어린이의 혈액 5ml를 수집합니다. 알코올 램프의 불꽃 위에 병을여십시오. 바늘을 제거한 후 주사기에서 약병에 혈액을 추가하십시오. 알코올 램프의 불꽃으로 병의 목과 마개를 태우고 마개로 병을 닫으십시오. 병뚜껑이 젖지 않도록 조심스럽게 내용물을 원을 그리며 섞습니다.

항생제를 중화하고 혈액 세포를 파괴하는 배지 및 시약이 포함된 기성품 병을 사용하거나 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 병을 사용하는 경우 성인으로부터 10-30ml의 혈액을 채취합니다. 어린이의 경우 0.5ml, 3.0ml.

여기서:

천공을 위해 피부 부위를 소독하는 것과 병행하여 병 뚜껑을 70% 에틸 알코올로 처리합니다(예를 들어 Bactec, Vital 및 기타 유사한 병으로 작업할 때 뚜껑을 처리하는 데 요오드 용액을 사용할 수 없습니다). , 확립된 명령에 따라 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인됨)

용기 뚜껑에 구멍을 뚫은 후 동일한 양의 성인으로부터 받은 혈액을 "호기성" 및 "혐기성" 용기에 넣습니다. 어린이에게서받은 혈액-특별한 "아기"병에 담아 용기 뚜껑을 뚫습니다.

6.1.6. 자극(화상)을 방지하기 위해 배지가 담긴 용기에 정맥 천자 및 혈액 배양을 한 후 70% 에틸 알코올을 적신 면봉을 사용하여 환자의 피부에 남아 있는 요오드를 제거합니다.

6.2. 중추신경계(CNS)의 감염 및 염증 과정에 대한 테스트

6.2.1. 분비액. 척추 L3-L4, L4-L5 또는 L5-S1 사이의 거미막하 공간의 요추 천자 및 뇌의 측면 뇌실 천자 중에 얻은 뇌척수액 4.0-5.5ml는 다음을 위해 미생물학 실험실로 보내집니다. 연구.

샘플 수집은 실험실 연구용 재료 세 부분을 세 개의 튜브에 천천히 채우는 방식으로 수행됩니다. 꼭 맞는 캡이 있는 멸균 튜브를 사용하십시오(멸균 고무 마개가 있는 마개 또는 유리로 일회용).

요추 천자 중에 얻은 물질이 포함된 세 개의 튜브 중에서 가장 혼탁한 내용물이 있는 튜브가 항상 보내지며, 일반적으로 이는 샘플 수집 과정에서 두 번째 튜브입니다.

뇌의 측뇌실에 구멍을 뚫어 물질을 얻을 때, 미리 바늘을 제거한 주사기에서 새로 채취한 뇌척수액을 알코올 램프의 불꽃, 튜브의 목 및 마개는 알코올 램프 불꽃으로 연소되고(면 거즈 또는 고무 마개로 밀봉된 유리 시험관을 사용하여 작업하는 경우) 마개가 있는 시험관을 닫습니다.

수막염이 의심되는 모든 경우에는 뇌척수액 외에도 의심되는 감염 부위에서 물질을 수집합니다. 비인두, 중이, 혈액 샘플의 면봉을 채취하고 뇌척수액과 함께 실험실로 보냅니다. 수막구균을 장기간(최대 48시간) 보존하는 좋은 방법은 면봉 탐침을 사용하여 도말로 물질을 채취하고 활성탄이 있거나 없는 운반 매체가 있는 시험관에 넣는 것입니다.

미생물 연구용 주류는 35~37°C의 온도를 유지하기 위해 가열 패드 위에 즉시 실험실로 보내집니다. 이것이 가능하지 않은 경우, 액체를 운송 매체가 담긴 용기에 모아 아침까지 냉장고(4-8°C 온도)에 방치한 후 실험실로 전달합니다.

바이러스학 연구를 수행해야 하는 경우 뇌척수액 샘플을 2~8°C 온도의 냉장고에 넣거나 냉동하거나 특수 액체 매질이 담긴 용기를 사용하여 실온에서 보관합니다.

6.2.2. 뇌농양의 물질. 90%의 사례에서 혐기성 미생물이 샘플에서 자라는 점을 고려하면, 발생 시 물질을 흡입하여 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 혐기성 환경의 용기에 담아 실험실로 보냅니다. 또는 미리 바늘을 제거하고 멸균 고무 마개로 주사기를 닫은 채 샘플을 수집한 주사기에 사용합니다.

샘플은 수령 즉시 배송됩니다.

6.2.3. 생검 재료. 수술 중에 샘플을 채취하여 혐기성 환경의 용기 또는 티오글리콜레이트 배지가 들어 있고 멸균 고무 마개로 막힌 멸균 튜브에 넣습니다.

재료는 즉시 실험실로 보내집니다.

6.3. 눈의 감염성 및 염증성 과정에 대한 테스트

눈에서 채취한 대부분의 검체는 안과의사가 채취합니다. 이들 검체는 환자의 병상이나 진료실, 진료실에서 배양 배지에서 배양해야 하며, 접종된 물질은 병원균의 배양, 분리, 식별 및 항생제 감수성 결정을 위해 실험실로 옮겨야 합니다. . 침습적 방법과 기타 공격적인 방법을 사용하여 채취한 검체는 결막 도말 검사와 병행하여 수집되며, 이러한 경우 대조용으로 사용됩니다.

전날 6~8시간(야간)에는 모든 약과 시술을 취소합니다.

감염성 염증 과정의 특정 임상 증상이 있거나 의사가 의심하는 경우 마취 전에 클라미디아와 바이러스를 확인하기 위해 도말 검사를 준비하고 약물을 실험실로 보내야합니다. 클라미디아와 바이러스를 보존하기 위해 물질은 운송 매체와 함께 용기에 수집됩니다.

분비물은 멸균 유리 막대 또는 멸균 면봉 탐침을 사용하여 수집합니다. 눈꺼풀 가장자리에서 아래쪽 전환 주름의 점막을 따라 2~3회 문지릅니다. 궤양의 경우 - 각막 (마취 후), "각 결막염"의 경우 - 눈꺼풀 모서리에서.

부드럽게 마사지한 후 멸균된 면봉 탐침을 사용하여 눈물낭의 분비물을 수집합니다.

막대 및/또는 면봉 탐침으로 채취한 물질은 운반 매체가 담긴 용기 또는 액체 매체가 담긴 멸균 유리관에 담아 검사실로 운반합니다. 이때 시료의 셀룰로오스나 면 거즈 마개를 담그지 않도록 주의하십시오. 튜브.

면봉 탐침을 사용할 때는 운반 매체가 들어 있는 일회용 용기나 멸균 매체가 채워진 면 거즈 마개가 달린 멸균 유리관을 사용하는 것이 좋습니다.

염증 과정의 원인 물질에 대한 가장 정확한 정보는 긁힌 자국의 미생물 분석을 통해 얻을 수 있습니다.

6.3.1. 결막염 및 안검 결막염. 전날, 6~8시간(야간)에는 병원 내 환자에 대한 모든 약품 및 시술이 취소됩니다.

결막 샘플은 일회용 멸균 튜브 또는 유리 튜브에 있는 멸균되고 미리 적셔진 비스코스 또는 알긴산칼슘 면봉 탐침을 사용하여 수집됩니다. 각 눈의 검체는 점막을 따라 2~3회 원을 그리며 별도의 면봉으로 채취합니다.

각 눈에서 채취한 면봉이 들어 있는 튜브에는 각각 "오른쪽"과 "왼쪽"이라는 라벨이 붙어 있습니다. 즉시연구실로 보냈습니다.

긁기 전에 마취제(예: 프로파라카인 염산염 또는 처방된 방식으로 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 다른 마취제) 1-2방울을 투여합니다.

한 방향으로 2~3회 짧고 날카로운 움직임을 사용하여 특수 멸균 주걱을 사용하여 결막에서 긁힌 물질을 수집합니다. 조작하는 동안 눈은 열려 있어야 합니다.

검체 채취 시 속눈썹을 만지지 않도록 주의하세요.

깨끗하고 기름기가 없는 유리 슬라이드에 직경 1cm의 영역에 걸쳐 원을 그리며 재료를 적용하여 각 눈에서 최소 2번의 도말을 준비합니다.

단단히 밀폐된 특수 용기에 95% 메틸 알코올을 넣어 5분간 도말을 고정합니다.

즉시면봉 탐침이 달린 시험관과 얼룩이 묻은 안경은 실험실로 옮겨집니다.

6.3.2. 세균성 각막염. 전날, 6~8시간(야간)에는 병원 내 환자에 대한 모든 약품 및 시술이 취소됩니다.

6.3.1항에 설명된 대로 결막에서 2개의 검체를 채취합니다. 배양 결과는 각막 오염의 원인을 파악하는 데 유용할 수 있습니다(진균 감염이 의심되는 경우 하나의 검체가 사용됩니다).

바이러스 감염이 의심되는 경우 결막 삼출물과 긁어서 얻은 물질을 바이러스용 특수 운반 매체에 넣습니다.

마취는 6.3.1항에 표시된 대로 수행됩니다.

6.3.1항에 설명된 방법을 사용하여 3-5개의 스크랩을 수집합니다.

수집된 물질을 작은(5ml) 멸균 일회용 스크류 캡 튜브 또는 배지로 채워진 고무 마개를 갖춘 멸균 유리 튜브에 넣습니다.

유리 슬라이드에 2~3개의 도말을 준비하고 건조시킨 후 6.3.1항에 설명된 대로 고정합니다.

즉시모든 자료를 실험실로 옮깁니다.

6.3.3. 세균성 안내염. 미세한 바늘 흡인으로 유리체액 샘플(1-2ml)을 수집하고 유리체절제술 샘플을 얻습니다.

다음으로 다음을 수행합니다.

주사기에서 바늘을 제거한 후 내용물을 나사 캡이 달린 일회용 멸균 용기 또는 고무 마개로 단단히 닫힌 시험관에 넣습니다.

공기를 제거하고 바늘을 제거한 후 멸균 고무 마개로 주사기를 닫아 재료 샘플을 주사기에 남길 수 있습니다.

6.3.1항에 설명된 대로 결막에서 검체를 채취합니다.

모든 재료 즉시연구실로 보냈습니다.

6.3.4. 격막전 봉와직염. 70% 에틸 알코올과 1-2% 요오드 용액, 요오드포름 또는 규정된 방식으로 사용하도록 승인된 기타 소독제로 피부를 치료하십시오.

열린 상처가 없으면 위쪽 또는 아래쪽 눈꺼풀을 뚫어 물질을 수집합니다.

열린 상처가 있는 경우, 주사기와 바늘을 사용하여 화농성 물질 샘플을 수집하십시오.

6.3.1항에 설명된 대로 유리 슬라이드에 도말을 준비합니다.

수집된 물질을 혐기성 미생물용 배지가 있는 운반 용기로 옮기거나 주사기에 그대로 두십시오. 주사기는 공기를 제거하고 바늘을 제거한 후 마개로 닫혀 있습니다.

수집된 물질과 도말 즉시연구실로 보냈습니다.

6.3.5. 안와 봉와직염. 단락 6.3.2에서 앞서 설명한 방법에 따라 구역에서 흡인물을 수집합니다.

6.3.1항과 같이 결막에서 검체를 채취하고 유리 슬라이드에 도말을 준비합니다.

실험실로 배송하려면 6.3.3항에 설명된 재료를 사용하십시오.

단락 6.1에 설명된 방법에 따라 환자로부터 혈액 샘플을 수집합니다. 혈액 샘플과 수집된 모든 물질은 실험실로 보내집니다.

6.3.6. 눈물샘 염증(누선염).

6.3.1항과 같이 탐침 탐폰을 사용하여 화농성 내용물을 수집합니다.

눈물샘의 완전성을 방해하지 않도록 바늘 흡인 방법을 사용하지 마십시오.

면봉 탐침과 도말이 있는 슬라이드가 실험실로 보내집니다.

6.3.7. 누낭의 염증(누낭염). 6.3.1항과 같이 결막에서 검체를 채취합니다.

누낭을 마사지하고 눌러 배양 및 도말 준비를 위한 삼출물 샘플을 얻거나 다른 방법을 사용하여 주사기와 바늘로 삼출물을 수집합니다.

수집된 삼출물 샘플을 앞에서 설명한 대로 운반 용기에 넣고 실험실로 운반합니다.

6.3.8. 소관염. 눈꺼풀 안쪽을 눌러 고름을 빼냅니다.

다음으로, 이 섹션 앞부분에서 설명한 방법에 따라 작업이 수행됩니다.

치료 및 예방 기관에 전문 부서(클리닉)가 있는 경우 모든 배양은 실험실에서 얻은 영양 배지를 사용하여 환자의 병상에서 수행됩니다. 준비된 도말과 함께 접종된 물질은 실험실로 옮겨집니다.

6.4. 귀의 감염성 및 염증성 과정에 대한 테스트

6.4.1. 외이가 영향을 받은 경우, 피부를 70% 알코올로 치료한 후 멸균 식염수로 씻어냅니다. 병변으로부터의 분비물은 운반 매체가 포함된 튜버 또는 시험관의 멸균 일회용 탐폰 또는 특수 매체 유무에 관계없이 마개로 닫혀 있는 멸균 유리관에 장착된 탐폰에 수집됩니다. 면봉은 튜브에 담겨 실험실로 전달됩니다.

6.4.2. 중이와 내이가 영향을 받은 경우, 수술 중에 얻은 점과 기타 물질을 수집합니다. 품목은 사전에 공기가 제거된 폐쇄형 주사기에 담겨 실험실로 전달됩니다. 조직 샘플 - 확립된 절차에 따라 러시아 연방에서 이러한 목적으로 사용하도록 승인된 혐기성 미생물용 배지가 포함된 운송 용기 또는 나사 캡이 있는 멸균 일회용 용기에 들어 있습니다. 멸균 고무 마개로 막힌 멸균 유리관을 사용하는 것도 가능합니다.

6.4.3. 고막의 고막천자는 환자가 이전 치료에 반응하지 않거나 카타르성 중이염의 무감각한 과정에서, 심지어 돌출된 혈액에 삼출물이 시각적으로 없는 경우(비인두 배양)의 경우에만 중이 감염의 미생물학적 진단을 위해 수행됩니다. 90% 미만의 경우에서 양성입니다).

검체를 채취하려면 70% 에틸알코올을 적신 면봉을 사용하여 외관을 깨끗이 닦은 후 멸균 식염수로 처리합니다.

주사기를 사용하여 고막강에서 체액을 수집합니다. 샘플은 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기 또는 사전에 공기를 제거한 폐쇄형 주사기에 담아 실험실로 전달됩니다.

고막이 손상된 경우 거울을 사용하여 면봉 탐침으로 물질을 수집합니다. 면봉은 멸균된 일회용 튜브(튜저) 또는 운반 매체가 담긴 용기(배지가 있거나 없는 멸균 유리관을 사용할 수 있음)에 넣고 이 형태로 실험실로 전달됩니다.

6.5. 호흡기의 감염성 및 염증성 과정에 대한 테스트

6.5.1. 상부 호흡 기관. 환자에게 디프테리아, 백일해, 클라미디아, 마이코플라스마증, 레지오넬라증 또는 임질이 의심되는 경우, 실험실 직원은 샘플을 전달하기 전에 이러한 유형의 물질을 분석할 준비를 하도록 이에 대한 정보를 받습니다.

6.5.1.1. 비강 전방 점막의 검체는 멸균된 일회용 튜브(튜브저)에 장착되거나 특별히 멸균 유리관에 장착된 하나의 멸균 면봉 탐침을 사용하여 수집됩니다.

시험관에서 탐폰을 꺼내 오른쪽 콧구멍에 삽입한 다음 회전 운동을 사용하여 코 날개와 비강 입구의 위쪽 모서리에서 물질을 수집합니다.

왼쪽 콧 구멍에 대한 조작을 반복하십시오.

면봉을 시험관에 넣고 실험실로 전달합니다.

이러한 방식으로 얻은 샘플은 의료 종사자의 황색 포도상구균 보균 여부, 병원 감염 병원체의 존재 여부를 확인하고 환자의 포괄적인 임상 면역 미생물학 검사 중 상부 호흡기 점막의 생체 장애 장애를 특성화하는 데 유용합니다. 과학적이고 실용적인 실험실에서 수행됩니다.

비강에 염증이나 궤양의 병소가 있는 경우, 병변의 물질을 별도의 면봉으로 수집합니다.

6.5.1.2. 비인두 흡인물은 화농성 연쇄상구균, 수막구균, 디프테리아 및 백일해 병원체의 전파 여부를 확인하고 S. pneumoniae 및 H. 인플루엔자의 항균 저항성에 대한 역학 연구를 위해 수집됩니다.

비인두에서 물질을 빨아들입니다.

임상 물질 검체에 담그지 않도록 주의하면서, 가스 투과성 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개가 달린 특수 멸균 튜브나 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기에 재료를 옮깁니다.

6.5.1.3. 비인두 면봉. 이 물질은 수막구균의 보균 여부를 확인하고 백일해를 진단하기 위해 수집됩니다.

하부 비강을 따라 부드럽게 회전하는 움직임을 사용하여 면봉, 비스코스 또는 칼슘 알지네이트 탐폰을 비인두에 번갈아 양쪽 콧구멍에 삽입합니다. 동시에, 코의 날개가 탐폰과 비중격에 밀착되어 점막에 더 밀착됩니다.

면봉을 멸균 튜브에 넣고 실험실로 전달합니다.

6.5.1.4. 비강 세척은 박테리아 감염뿐만 아니라 주로 바이러스 감염의 존재를 확인하는 데 사용됩니다.

환자는 시술 중에 삼키지 않도록 경고받습니다.

환자의 머리를 약 70° 각도로 위아래로 놓고 각 콧구멍에 멸균 식염수 5ml를 주입한 후 3~5초 동안 이 자세를 유지해야 합니다.

물질을 수집하려면 환자의 머리를 앞으로 낮추어 수액이 콧구멍에서 멸균된 일회용 용기로 흐르도록 하거나 각 콧구멍에 고무 배출구를 삽입하여 수액을 흡인합니다.

동일한 양의 세척액을 바이러스 운반 매체가 들어 있는 용기에 넣거나 이 부분을 멸균된 일회용 용기에 담습니다.

6.5.1.5. 부비동 점상. 특별한 훈련을 받고 경험이 풍부한 의사 또는 이비인후과 전문의가 주사기 흡인 기술을 사용하여 상악 전두엽 또는 기타 부비동에서 물질을 채취합니다. 주사기의 내용물을 혐기성 미생물용 운반 매체가 담긴 용기 또는 티오글리콜레이트 매체가 담긴 멸균 튜브에 넣습니다. 주사기에 재료를 남겨두고 멸균 고무 마개로 닫은 후 실험실로 전달할 수 있습니다.

6.5.1.6. 인두(인두)의 점막에서 샘플을 채취합니다.

후두개 염증이 있는 인두(인두)에서 물질을 수집하는 것은 허용되지 않습니다. 절차가 심각한 호흡 곤란을 초래할 수 있기 때문입니다.

인두(인두) 점막에서 검체를 채취할 때 면봉으로 뺨, 혀, 잇몸, 입술의 점막을 만지지 말고, 타액도 채취하지 마십시오. 이 물질은 구강 점막의 특징이므로 공동, 즉 위장관의 상부입니다.

목구멍(인두)에서 채취한 면봉은 공복에 또는 식사 후 3~4시간 후에 채취됩니다. 샘플을 채취하기 전에 환자는 따뜻한 끓인 물로 입을 헹구어야 합니다.

샘플을 얻으려면 멸균 주걱 또는 면봉을 사용하십시오. 멸균 일회용 시험관(튜브)에서 비스코스 면봉을 제거하거나 실험실에서 준비한 면봉을 멸균 유리 시험관에 장착하여 사용하십시오. 비스코스 헤드가 있는 면봉 탐침을 사용하는 것이 더 좋습니다. 비스코스는 액체를 덜 흡수하고 세포 물질을 더 많이 흡수합니다.

한 손으로 멸균 주걱으로 환자의 혀를 누르십시오.

한편, 물질을 채취하여 오른쪽 편도선, 오른쪽 구개궁, 왼쪽 편도선, 왼쪽 구개궁, 목젖을 탐폰으로 교대로 치료하며, 목젖 수준에서는 후벽에 닿는다. 탐폰이 있는 인두.

이러한 방식으로 얻은 샘플은 병원 감염 병원체의 존재를 확인하는 데 유용할 뿐만 아니라 과학적이고 실제적인 실험실에서 수행되는 환자에 대한 포괄적인 임상 및 면역 미생물학적 검사 중에 상부 호흡기 점막의 생체 장애 장애를 특성화하는 데 유용합니다. .

점막에 염증이나 궤양의 병변이 있는 경우 검체 채취 시 특히 주의하고 별도의 면봉을 사용하여 병변에서 추가 물질을 채취하십시오.

면봉을 멸균된 일회용 또는 유리관에 넣고 실험실로 전달합니다.

6.5.1.7. 디프테리아가 의심되는 경우 실험실 직원에게 해당 방향으로 진단을 알리는 정보를 제공합니다.

호흡기 병리학적 과정의 경우 앞서 제시한 방법에 따라 비인두와 인두의 점막에서 물질을 동시에 수집합니다.

피부 형태의 디프테리아가 의심되는 경우, 피부뿐만 아니라 인두(인두)와 비인두의 점막에서도 물질을 수집하고 모든 샘플을 실험실로 전달합니다.

6.5.2. 하부 호흡기. 하기도의 염증 과정에 대한 미생물학적 진단은 심각한 어려움을 나타냅니다. 수집 과정에서 검체는 상기도에 서식하는 미생물로 오염될 수 있습니다. 이 생태학적 틈새는 특히 이상세균증(질적 - 종 구성 및/또는 정량적 - 약화된 및/또는 면역 저하된 대상의 우발적 조건에서 CFU/ml에 존재하는 종의 농도)이 있는 경우 기회주의적인 미생물로 상당히 많이 오염되어 있습니다.

이러한 이유로, 하기도의 물질 샘플은 병인 물질에 대한 정확한 정보를 얻기 위해 특별한 주의를 기울여 수집됩니다. 침습적 방법을 사용하여 샘플을 수집하는 경우(수술 중에 이러한 일이 발생하지 않는 경우) 사용된 기구는 상부 호흡기관을 통과하며 상부 호흡기관에 서식하는 미생물이 있는 더 깊은 유전자좌를 파종할 가능성이 있습니다.

6.5.2.1. 담.

자유롭게 뱉어내는 가래- 오전수집을 선호합니다.

검체를 채취하기 전에 환자는 가능하면 이를 닦고 따뜻한 끓인 물로 입과 목을 헹구어야 하며, 환자가 스스로 할 수 없는 경우 구강의 화장실은 의료진이 수행합니다. .

환자는 타액이나 비인두 분비물을 용기에 모으지 않도록 경고받습니다.

깊은 기침으로 인해 얻은 객담 검체는 나사형 캡이 달린 특수 멸균 일회용 용기 또는 특별히 준비된 멸균 유리병에 수집됩니다.

가래 검체는 실험실로 보내집니다.

가래 유발(주로 결핵균과 폐포자충이 의심되는 경우 권장)- 오전수집을 선호합니다.

검체를 채취하기 전에 환자는 가능하다면 이를 닦고 따뜻한 끓인 물로 입과 목을 헹구어야 합니다. 환자가 스스로 할 수 없으면 구강 화장실은 의료진이 수행합니다.

시술 전, 깨끗한 칫솔에 따뜻한 끓인 물을 적셔 양쪽 볼, 혀, 잇몸의 점막을 닦아주세요.

따뜻한 끓인 물로 환자의 입을 적극적으로 헹구십시오.

흡입기를 사용하여 환자가 3~10% 멸균 식염수 용액 20~30ml를 삼키도록 합니다.

유도된 객담은 스크류 캡이 있는 특수 멸균 일회용 용기 또는 그에 따라 준비된 멸균 유리병에 수집합니다.

샘플은 실험실로 보내집니다.

객담 검체와 동시에 인두(인후) 검체를 실험실로 보내야 하며, 구강 내 용변을 본 후 가래를 채취하기 직전에 채취하여 자유롭게 분리(객담)하거나 유도해야 합니다.

6.5.2.2. 기관절개술 및 기관내 흡인. 기관절개술에는 환자의 삽관 후 24시간 이내에 미생물이 집락화되어 있어 문화연구 결과의 임상적 유의성은 낮다. 위와 같은 점을 감안할 때, 삽관된 환자에서 얻은 배양 결과는 임상 데이터(예: 발열 또는 엑스레이에서 침윤의 출현)와 지속적으로 비교되어야 합니다.

가능하다면 긁기 또는 생검 샘플을 얻기 전에 기관지 세척 또는 기관지폐포 세척 샘플을 수집합니다. 이 규칙은 생성된 체액에 과도한 혈액이 들어가는 것을 방지해야 한다는 요구 사항에 따라 결정됩니다. 혈액은 검체의 세포 및 비세포 성분의 농도를 변화시키고 미생물학적 분석 결과에 영향을 미칠 수 있습니다.

흡인 샘플은 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기, 적절하게 장착된 멸균 유리 용기, 또는 마개가 있는 멸균 일회용 유리관에 수집되거나 공기가 제거된 폐쇄형 주사기에 담겨 실험실로 전달됩니다.

6.5.2.3. 기관지경을 사용하여 얻은 샘플. 기관지 폐포 세척(선택한 샘플), 기관지 세척(폐렴 진단에 낮은 민감도), 기관지 긁기(세척보다 더 중요함), 경기관 생검 샘플은 삽관되지 않은 환자에게 기관지경을 비강 또는 경구로 삽입하거나 기관내관을 통해 채취합니다. 삽관된 환자의 경우.

기관지 세척 또는 기관지폐포 세척 샘플을 얻으려면:

멸균 비정균(공식) 생리학적 용액을 기관지경의 생검 채널을 통해 주사기로 별도의 부분(총 부피 5-20 ~ 100 ml)으로 주입합니다.

식염수 용액의 다음 부분을 주입하기 전에 주사기의 삽입 부분을 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기 또는 마개가 있는 멸균 일회용 또는 유리관에 조심스럽게 흡인하거나 미리 제거한 닫힌 주사기에 그대로 두십시오. 그것으로부터의 공기 (보통 주입된 식염수 용액의 50-70%가 세척 중에 있음);

흡입된 각 부분은 별도의 용기에 수집됩니다.

절차가 끝나면 동일한 영역에서 얻은 샘플을 결합합니다. 서로 다른 부위(예: 폐의 오른쪽 상엽과 오른쪽 하엽)에서 채취한 검체는 담당 의사와 상담한 후에만 함께 결합해야 합니다.

방향은 주입된 식염수의 총 부피를 나타냅니다.

기관지 긁어내기 샘플을 얻으려면:

폴리에틸렌 글리콜(또는 기타 적절한 시약)로 처리된 말단부를 갖춘 신축형 이중 카테터를 기관지경의 생검 채널을 통해 삽입하여 시료의 오염을 방지합니다.

스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기, 혐기성 배지가 있는 운반 용기 또는 멸균 고무 마개로 단단히 밀봉된 티오글리콜레이트 배지가 있는 멸균 튜브에 물질을 수집합니다.

재료를 실험실로 전달합니다.

경기관지 생검을 얻기 위해, 기관지경의 생검 채널을 통해 검체를 수집하고, 이를 소량(1-2ml)의 비정균(공식) 식염수 용액과 함께 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기에 넣습니다. 티오글리콜레이트 배지가 들어 있는 시험관에 넣고 고무 마개로 단단히 닫은 후 실험실로 옮깁니다.

6.5.2.4. 폐 흡인 샘플. 검체를 수집하기 위해 컴퓨터 단층촬영 스캐너의 제어하에 바늘을 흉골을 통해 폐 침윤물로 삽입합니다. 물질은 염증 부위에서 흡인됩니다. 침윤물이 많거나 여러 개가 있는 경우 해당 병변에서 여러 개의 샘플을 채취하거나 하나의 큰 병변에서 여러 개의 샘플을 채취해야 합니다. 물질은 혐기성 배지가 들어 있는 운반 용기, 티오글리콜레이트 배지가 들어 있는 유리관 또는 나사식 일회용 용기에 담겨 실험실로 옮겨집니다.

6.5.2.5. 폐 생검 샘플. 가능하면 1~3cm 크기의 조직 조각을 채취하고, 병변이 크거나 여러 개가 있는 경우에는 여러 개의 검체를 채취합니다. 시료를 스크류 캡이 있는 멸균 일회용 용기나 혐기성 미생물용 배지가 있는 운반 용기, 또는 멸균 고무 마개로 막힌 티오글리콜산염 배지가 있는 용기(시험관)에 넣습니다.

6.6. 비뇨생식기계의 감염성 및 염증성 과정에 대한 테스트

6.6.1. 소변 샘플.

6.6.1.1. 샘플 수집에 대한 일반 규칙:

침대 린넨이나 소변 주머니에서 소변을 수집하는 것은 허용되지 않습니다.

자연 배뇨 중 소변을 분석하려면 평균 아침 시간을 사용하십시오.

검체를 채취하기 전에 따뜻한 끓인 물로 외부 생식기와 항문 부위를 철저히 헹구는 것이 필요합니다. 이 경우, 시술 중에 샘플이 미생물로 추가로 오염되지 않도록 남성의 요도 개구(여성의 질 현관) 치료에 특별한 주의를 기울여야 합니다.

처리를 위해 소독제를 사용할 수 없습니다. 샘플에 도입되면 미생물의 성장을 억제할 수 있습니다.

샘플은 수집 순간부터 2시간 이내에 실험실로 옮겨집니다.

검체를 채취하여 실험실로 운반할 때에는 스크류 캡이 달린 멸균된 일회용 용기나 시험관을 사용하십시오. (가스 투과성 셀룰로오스 또는 면 거즈 마개를 갖춘 멸균 특수 장착 유리관을 사용할 수도 있지만, 사용하지 않도록 특별히 주의하십시오.) 마개를 담그십시오);

방광의 치골상부 천자 기술을 사용하여 얻은 흡인 샘플을 실험실로 전달하는 것은 혐기성 세균을 위한 특수 매체가 있는 운반 용기 또는 바늘이 없는 폐쇄형 주사기에서 수행됩니다.

바이러스 감염이 의심되는 경우, 녹은 얼음 위에 놓인 멸균 일회용 용기에 샘플을 담아 실험실로 전달합니다(드라이아이스는 허용되지 않습니다!).

카테터(특히 여성의 경우)를 사용하여 검체를 채취하는 모든 절차는 카테터 삽입 중 환자의 추가 오염을 방지하기 위해 무균 규칙을 주의 깊게 준수하여 수행됩니다.

미생물학 연구의 경우 일일 시료의 시료를 사용할 수 없습니다.

6.6.1.2. 자연 배뇨 중 여성으로부터 소변 샘플을 수집합니다.

중간 부분을 사용하세요. 왜냐하면... 첫 번째 소변 통과 시 요도에 존재할 수 있는 모든 공생균이 제거되어야 합니다. 다음 과정에서 수집된 샘플은 오염되지 않아야 합니다. 이러한 물질의 양성 결과에 대한 신뢰도는 1개의 검체를 채취한 경우 80%, 2개의 연속 검체를 채취한 경우 90%, 모든 검체가 동일한 결과를 나타내는 경우 3개의 검체를 채취한 경우 100%입니다.

검체를 채취하는 의료진은 비누로 손을 씻고 물로 헹구고 말려야 합니다. 환자가 직접 검체를 채취하는 경우, 위에 설명된 준비 사항을 고려하여 이것이 어떻게 수행되는지 자세히 설명하고, 규칙을 위반할 경우 발생할 수 있는 일에 대해 경고합니다.

비눗물이나 액체 비누로 요도 입구와 질 현관 ​​부위, 회음부와 항문을 철저히 헹구고 따뜻한 끓인 물로 헹구고 멸균 거즈 천으로 말려야합니다.

질 입구는 멸균된 면봉으로 막아야 합니다.

배뇨 중에 외부 음순을 서로 멀리 유지하십시오.

계속해서 소변을 보는 동안 소량의 소변을 특수 용기에 배출하여 처리합니다.

스크류 캡이 달린 특수 일회용 용기 또는 실험실에 특별히 설치된 멸균 유리 용기에 중간량의 소변(10-20ml)을 수집합니다.

6.6.1.3. 자연 배뇨 중 남성으로부터 소변 샘플을 수집합니다.

남성의 경우 미생물학적 검사를 위해 소변의 일부가 필요합니다. 오염 가능성은 여성보다 훨씬 낮습니다.

검체를 채취하는 사람은 비누로 손을 씻고 물로 헹구고 말려야 합니다. 환자가 직접 검체를 채취하는 경우 아래 설명된 준비 사항을 고려하여 채취 방법을 자세히 설명하고 규칙을 따르지 않을 경우 발생할 수 있는 일에 대해 경고해야 합니다.
[이메일 보호됨], 우리가 알아낼 것입니다.

PCR 방법을 사용하여 연구를 수행하는 것은 실험실에 독립적인 작업 영역이 있거나 PCR 분석 단계에 해당하는 다른 기능적 전제의 일부로 할당된 작업 영역이 있는 경우 기존 실험실을 기반으로 허용됩니다.

PCR 실험실에는 다음과 같은 최소 작업 공간이 포함되어야 합니다.

• 자료 접수, 등록, 분석 및 초기 처리;
• DNA/RNA 분리;
• 반응 혼합물을 준비하고 PCR을 수행하는 단계;
• 전기영동 또는 균사에 의한 증폭 산물의 검출.

이 방법을 사용할 때 전기영동으로 증폭 산물을 검출할 필요가 없다는 점에 유의하는 것이 중요합니다. 따라서 전기영동을 위해 실험실에 작업 공간을 할당할 필요가 없습니다.

PCR 실험실에서는 보관소(회계 문서용), 직원실, 관리자 사무실, 직원용 라커룸, 식사실, 위생실(화장실), 다용도실( 창고).

이상적으로는 시험물질을 소독하기 위한 고압멸균실이 필요합니다. 생물학적 안전 요구 사항을 준수하는 경우 해당 기관의 다른 부서와 공유될 수 있습니다.

PCR 분석 단계에서 작업을 수행하기 위한 전제는 상자에 넣어야 합니다(사전 상자가 있는 상자). 자료 접수, 등록, 분석 및 1차 처리 분야물질 접수, 시료 준비(분류, 라벨링, 원심분리 등), 보관 및 소독제로 생체 물질 잔류물의 일차 불활성화를 수행합니다. 자료 접수, 등록, 분석 및 1차 처리를 위한 공간은 자료 접수실 또는 별도의 박스룸에 있습니다. PCR 분석을 위해 별도의 장비를 갖춘 워크스테이션이 할당된 경우 여기에서 다른 방법(예: 면역학)을 사용하여 연구용 샘플을 받고 처리할 수도 있습니다.

DNA/RNA 분리 영역별도의 방에 배치되었습니다. 기존 실험실을 기반으로 PCR 실험실을 구성하는 경우 유전공학 작업을 제외하고 다른 유형의 연구가 수행되는 장소에서 DNA/RNA 분리가 허용됩니다. 이 경우 DNA/RNA 분리를 위한 작업 공간이 PCR 상자 또는 생물학적 안전 상자가 있는 방에 구성됩니다. DNA/RNA 분리를 위한 PCR 상자에서는 다른 유형의 작업이 허용되지 않습니다!

반응 혼합물을 준비하고 PCR을 수행하는 영역 PCR 혼합물 준비, 분리된 DNA/RNA 또는 cDNA 준비물을 PCR 튜브에 추가, RNA 역전사 및 DNA 또는 cDNA 증폭. 반응 혼합물을 준비하는 공간과 PCR을 수행하는 공간은 분리되어야 합니다. PCR 반응 혼합물의 준비는 PCR 상자에서 수행됩니다.

필요한 경우 DNA/RNA 분리 단계는 반응 혼합물을 준비하고 별도의 PCR 상자가 있는 경우 PCR을 수행하는 단계(반응 PCR 혼합물을 준비하고 DNA/RNA 분리를 위해)를 한 공간에서 결합할 수 있습니다.

증폭산물 감지 구역가능한 경우 PCR 상자가 장착된 별도의 방에 위치합니다. 증폭산물 검출을 위해 전기영동법과 혼성화 분석법을 동시에 사용해야 하는 경우에는 혼성화 분석을 위해 검출실에 별도의 작업 공간을 할당해야 합니다. 이 경우 각 감지 유형에 대한 장비 및 액세서리는 각 구역과 관련하여 표시됩니다. 전기영동용 피펫과 유리 제품은 혼성화 분석에 사용할 수 없습니다.

계획 결정 및 장비 배치는 연구 중인 자료의 흐름을 보장해야 합니다. 증폭산물 탐지실과 다른 방 사이의 공기 교환은 완전히 제거되어야 합니다.

PCR 실험실에는 상하수도, 전기 및 난방 시설이 갖추어져 있습니다. PCR 실험실의 모든 공간에는 충분한 자연 조명과 인공 조명이 제공됩니다.

PCR 실험실을 새로 건설하거나 기존 PCR 실험실을 재구성할 때 건물에는 공급 및 배기 또는 배기 환기 시설이 갖추어져 있습니다. PCR 실험실 방의 기압 차이는 공기 교환율의 차이로 인해 발생합니다. 항공 환율은 표에 주어진 값과 일치해야 합니다.

필요한 경우 PCR 실험실에 에어컨을 설치할 수 있습니다.

건물의 실내 장식은 기능적 목적에 따라 수행됩니다. 실험실 건물의 벽, 바닥 및 천장 표면은 매끄럽고 균열이 없어야 하며 처리가 용이하고 세제 및 소독제에 대한 내성이 있어야 합니다. 바닥은 미끄럽지 않아야 합니다. 실험실 가구에는 세제와 소독제에 대한 내성이 있는 코팅이 되어 있어야 합니다. 테이블 표면에 균열이나 이음새가 없어야 합니다. 실험실 건물은 설치류와 곤충이 침투할 수 없어야 합니다. PCR 실험실에는 소화 장비가 제공됩니다.