Timpul optim pentru analiza de sânge este în intervalul de la 1 la 4 ore după recoltare.În intervalul de la 5 la 30 de minute, trombocitele se adaptează temporar la anticoagulant și are loc agregarea lor, ceea ce poate duce la o falsă scădere a acestora în sânge. probă.

Nu este indicat să se examineze sângele mai târziu de 8 ore de la recoltare, deoarece Unele caracteristici ale celulelor se modifică: volumul de leucocite scade, volumul de celule roșii din sânge crește, ceea ce duce în cele din urmă la rezultate eronate de măsurare și la interpretarea incorectă a rezultatelor. Doar concentrația de hemoglobină și numărul de trombocite rămân stabile pe parcursul a 24 de ore de stocare a sângelui.

Sângele nu trebuie înghețat. Sângele capilar cu K 2 EDTA trebuie păstrat la temperatura camerei și analizat în decurs de 4 ore după colectare.

Pentru a asigura rezultate de cercetare de înaltă calitate, este necesar să se controleze în mod clar timpul și condițiile de depozitare a probelor înainte de a efectua analiza.

Dacă este necesară o analiză întârziată (transport pe distanțe mari, defecțiune tehnică a dispozitivului etc.), probele de sânge sunt păstrate la frigider (4 o - 8 o C) și examinate în 24 de ore. Cu toate acestea, trebuie luat în considerare faptul că apar umflarea celulelor și modificări ale parametrilor asociați cu volumul acestora. La oamenii practic sănătoși, aceste modificări nu sunt critice și nu afectează parametrii cantitativi, dar în prezența celulelor patologice, acestea din urmă se pot modifica sau chiar distruse în câteva ore din momentul prelevării sângelui.

Imediat înainte de test, sângele trebuie amestecat bine timp de câteva minute pentru a dilua anticoagulantul și pentru a distribui uniform elementele formate în plasmă. Amestecarea constantă pe termen lung a probelor până când acestea sunt examinate nu este recomandată din cauza posibilei leziuni și degradare a celulelor patologice.

Testele de sânge pe un analizor automat se efectuează la temperatura camerei. Sângele depozitat în frigider trebuie mai întâi încălzit la temperatura camerei, deoarece la temperaturi scăzute, vâscozitatea sângelui crește, iar elementele formate tind să se lipească, ceea ce, la rândul său, duce la o amestecare deteriorată și o liză incompletă. Examinarea sângelui rece poate provoca „semnale de alarmă” din cauza compresiei histogramei leucocitelor.

Atunci când se efectuează studii hematologice la o distanță considerabilă de locul de recoltare a sângelui, apar inevitabil probleme asociate cu condiții nefavorabile de transport. Impactul factorilor mecanici (agitare, vibrații, agitare etc.), condițiile de temperatură, probabilitatea de scurgere și contaminarea probelor pot afecta calitatea analizelor. Pentru a elimina aceste motive, la transportul tuburilor de sânge, se recomandă utilizarea tuburilor de plastic închise ermetic și a recipientelor speciale de transport izolate. În timpul transportului nu este permis contactul probei (cu material nativ) și al formularului de trimitere, în conformitate cu regulile de siguranță biologică.

^ 4.3. Recepția și înregistrarea materialului biologic

Tuburile cu probe de sânge venos sunt livrate la laborator în ziua recoltării în rafturi în pungi speciale pentru livrarea materialului biologic, în care tuburile trebuie să fie în poziție verticală, iar atunci când sunt transportate la distanță - în recipiente speciale.

Angajatul de laborator care primește materialul trebuie să verifice:

Corectitudinea înregistrării trimiterii: formularul de trimitere indică datele subiectului (nume, prenume și patronimic, vârstă, istoric medical sau nr. card ambulatoriu, secție, diagnostic, terapie efectuată);

Etichetarea tuburilor cu probe de sânge (trebuie marcate cu un cod sau prenume al pacientului, identic cu codul și prenumele din formularul de trimitere a materialului pentru cercetare). Asistentul de laborator trebuie să înregistreze materialul livrat și să noteze numărul de tuburi.

^ 4.4 Calculul compoziției celulare a sângelui pe un analizor hematologic

Calculul compoziției celulare a sângelui pe un analizor hematologic trebuie efectuat în strictă conformitate cu instrucțiunile pentru dispozitiv.

Când lucrați la un analizor hematologic, ar trebui să:

Utilizați sânge stabilizat cu K-2 EDTA în proporția recomandată pentru o anumită sare și tuburi de unică folosință pentru studii hematologice (simple sau în vid);

Înainte de analiză, amestecați cu grijă, dar temeinic, eprubeta cu sânge (se recomandă în acest scop utilizarea unui dispozitiv pentru amestecarea probelor de sânge - un rotomix);

Folositi reactivi inregistrati in conformitate cu procedura stabilita; atunci când schimbați reactivii cu produse de la alt producător, ar trebui să verificați și să stabiliți calibrarea dispozitivului;

Porniți dispozitivul, observând toate etapele de spălare, obținând valori zero (de fundal) ale indicatorilor pe toate canalele;

Acordați atenție mesajelor dispozitivului despre posibile erori sistematice: amintiți-vă că o creștere a MSHC peste valorile normale este de obicei rezultatul unei erori de măsurare;

Dacă este detectată o eroare, asigurați-vă că eliminați cauza și nu lucrați la un dispozitiv defect;

Efectuați procedurile de control al calității conform programului corespunzător. cu o evaluare a rezultatului obținut;

Lucrați semnificativ, comparând rezultatele obținute cu caracteristicile clinice ale probelor pacientului;

După finalizarea măsurătorilor, clătiți bine analizorul;

Când opriți dispozitivul pentru o perioadă lungă de timp, asigurați-vă că efectuați toate procedurile de conservare (dacă este posibil, împreună cu un inginer de service);

Dacă apar probleme tehnice, ar trebui să solicitați ajutorul unui inginer de service de la o companie care are licență de întreținere tehnică; Nu încredeți munca personalului neinstruit.

Când începeți să lucrați la un analizor hematologic, ar trebui să țineți cont de limitele liniarității măsurării parametrilor analizați. Evaluarea probelor cu valori ale parametrilor analizați care depășesc limita de liniaritate a măsurării poate duce la rezultate eronate. În cele mai multe cazuri, atunci când se analizează probe cu hipercitoză, analizorul afișează o pictogramă „D” (diluat) în locul valorii parametrului măsurat, ceea ce indică necesitatea diluării probei și repetarea măsurătorii. Diluțiile trebuie efectuate până când se obțin rezultate finale similare cu cele mai apropiate două diluții.

^ EXEMPLU ─ Analiza unei probe de la un pacient cu hiperleucocitoză pe trei analizoare hematologice diferite este prezentată în tabel.

Tabelul 3

¦Rezultatele numărării cantității pentru hiperleucocitoză, efectuată pe trei analizoare hematologice diferite

^ Analizoare hematologice	Gradul de diluare a probei				Valoarea totală
	^ Sânge integral	1:1	1:3	1:4	WBC
1	D	274,5	274,5	143,1	715,5
2	322,6	253,2	177,7	141,8	709,0
3	D	D	168,3	139,1	695,5

Tabelul arată că la analiza sângelui integral, doar un analizor (al doilea) a dat o valoare digitală pentru numărul de leucocite, celelalte două au indicat necesitatea diluării probei. Măsurarea ulterioară pas cu pas a probei în trei diluții a făcut posibilă obținerea unor rezultate finale similare pe toate instrumentele numai cu diluții de 1:3 și 1:4. Astfel, numărul final de leucocite a fost de 700,0 - 710,0 x 10 9 /l, ceea ce este de peste 2 ori mai mare decât valoarea inițială obținută în sângele integral la al 2-lea analizor și 1,5 - cu o diluție 1:1 la primul și al 2-lea analizor. .

1. 
   ^ Calibrarea analizoarelor hematologice

Calibrarea se referă la procedura de configurare a analizorului, rezultând în

Care realizează egalitatea componentei sistematice a erorii la zero (offset zero) sau confirmă că decalajul este egal cu zero ținând cont de eroarea de calibrare. Calibrarea analizoarelor hematologice poate fi efectuată în două moduri principale:

Pentru sânge integral;

Pe baza probelor de sânge stabilizate cu valori certificate.

^ 5.1 Calibrare folosind sânge integral

Calibrarea sângelui integral poate fi efectuată prin comparație cu un analizor de referință, a cărui calibrare a fost verificată și poate fi luată ca referință.

Pentru calibrarea prin comparație cu un analizor de referință, sunt utilizate 20 de probe de sânge venos ale pacientului selectate aleatoriu din programul zilnic de cercetare al unui laborator cu un analizor de referință. Sângele trebuie recoltat în tuburi vidate cu anticoagulant K 2 EDTA. După analiza pe un analizor de referință, tuburile de sânge sunt livrate la laborator pentru analiză pe un dispozitiv calibrat. Timpul dintre măsurătorile de pe analizorul de referință și cel calibrat nu trebuie să depășească 4 ore. Analiza probelor de calibrare pe instrumentul care este calibrat trebuie efectuată în același mod ca și analiza probelor pacientului. Rezultatele obținute sunt înscrise într-un tabel în forma dată în Anexa 1. Aceste rezultate sunt utilizate pentru a determina factorii de calibrare corespunzători, care sunt numeric egali cu coeficienții de pantă ai liniilor de calibrare care trec prin originea coordonatelor de pe grafic.

Factorii de calibrare sunt calculați pe un computer utilizând programul EXCEL, care face parte din pachetul Microsoft OFFICE pentru orice versiune. Pentru a calcula factorii de calibrare în acest program, se construiește o diagramă de împrăștiere, în care valorile măsurate sunt reprezentate de-a lungul axei X, valorile de referință sunt reprezentate de-a lungul axei Y și o linie de regresie este stabilită prin originea coordonatelor. Programul desenează o linie de calibrare și determină panta acesteia, care este factorul de calibrare dorit. Dacă sunt detectate erori grave - puncte eliminate semnificativ din linia de calibrare de pe grafic, acestea trebuie eliminate din calcul (ștergerea întregii linii din tabelul EXCEL). Factorul de calibrare rezultat este introdus în tabelul din apendicele 1 și este utilizat pentru a regla manual calibrarea dispozitivului în conformitate cu instrucțiunile de utilizare ale acestuia.

1. 
   ^ Calibrare folosind probe de sânge stabilizate cu valori certificate

Această metodă de calibrare se bazează pe materiale comerciale de calibrare și control, care sunt un amestec artificial de globule roșii umane stabilizate și celule umane sau animale fixe care imită leucocite și trombocite. Datorită diferenței semnificative între proprietățile biologice ale componentelor acestor materiale din sângele natural, valorile certificate ale parametrilor hematologici depind de tipul specific de analizor.

Ori de câte ori este posibil, ar trebui să fie utilizați calibratori care sunt special proiectați de producător pentru a calibra un anumit tip de analizor. Erorile punctului de referință în calibratoarele hematologice moderne sunt în general în concordanță cu cerințele medicale. Cu toate acestea, astfel de calibratoare nu sunt disponibile pentru toate tipurile de analizoare. În plus, din cauza termenului de valabilitate limitat (de obicei nu mai mult de 45 de zile), nu este întotdeauna posibil să se obțină mostre care nu sunt expirate.

Materialele de control nu sunt destinate de către producător în scopuri de calibrare: toleranțele pentru valori sunt mult mai largi, iar metodele de certificare și control al producției nu sunt la fel de stricte ca pentru calibratori. La calibrare, materialele de control pot fi folosite doar ca o singură sursă de informații despre proprietățile metrologice ale dispozitivului.

Cu toate acestea, trebuie avut în vedere faptul că atunci când se utilizează atât materiale de control, cât și calibratori în scopuri de calibrare, caracteristicile de pregătire a probei și de funcționare a analizoarelor au un impact semnificativ asupra componentelor erorii sistematice. Acești factori de influență nu pot fi luați în considerare la calibrarea cu materiale comerciale. Ca urmare, în toate cazurile, calibrarea efectuată trebuie verificată prin analiza statisticilor rezultatelor obținute în probele de pacienți (indici eritrocitari, intervale normale).

5.2.1 Frecvența de calibrare a analizoarelor hematologice

Cerințele pentru frecvența de calibrare sunt de obicei cuprinse în instrucțiunile de utilizare ale analizorului. În mod obișnuit, calibrarea este necesară după reparație sau când este detectată o deviere semnificativă în procedurile interne de control al calității din laborator.

5.2.2 Procedura de calibrare

Procedura de calibrare se efectuează în conformitate cu instrucțiunile de utilizare ale analizorului.

5.2.3 Monitorizarea rezultatului calibrării

Acest control constă în analiza probei de calibrare imediat după calibrare. Calibrarea finalizată este acceptată dacă rezultatele analizei corespund valorilor de calibrare, ținând cont de variația analitică a analizorului.

5.2.4 Verificarea calibrării folosind indici de celule roșii din sânge

Această metodă de verificare și rafinare a calibrării profită de faptul că valorile medii ale indicilor de celule roșii din sânge - MCHC, MCH și MCV între pacienți au o variație destul de mică și, prin urmare, pot fi utilizate eficient pentru controlul calibrării și controlul suplimentar al calității. Numărul recomandat de probe pentru mediere este de 20. Orice eșantion de pacient poate fi utilizată pentru a determina media MCHC, în timp ce pacienții cu anemie ar trebui excluși pentru a determina media MCHC și MCV.

Multe analizoare hematologice moderne au programe încorporate pentru calcularea mediilor curente, ceea ce facilitează foarte mult procesarea datelor.

Valorile țintă ale indicilor de eritrocite atunci când sunt mediate peste 20 de eșantioane de pacienți cu vârsta cuprinsă între 18 și 60 de ani, indiferent de sex, sunt prezentate în Tabelul 4.

Tabelul 4

Valorile țintă ale indicilor eritrocitari

Dacă valorile medii obținute sunt în afara toleranței de control, aceasta înseamnă că calibrarea MCV sau Hgb sau RBC trebuie ajustată.

Atunci când se determină motivele calibrării nesatisfăcătoare a parametrilor globulelor roșii atunci când se utilizează materiale comerciale de calibrare/control, trebuie luată în considerare următoarea evaluare a fiabilității valorilor certificate ale materialelor:

Parametrul cel mai precis și mai stabil în timp este concentrația de celule roșii din sânge;

Un parametru stabil este Hgb, dar poate depinde de reactivii utilizați (de exemplu, cianogen sau fără cianogen);

Cel mai instabil parametru este MCV. Valoarea MCV tinde să se modifice pe întreaga durată de valabilitate a materialului pe o gamă destul de largă de valori. La rafinarea calibrării MCV, datele obținute din analiza indicilor medii de celule roșii din sânge au prioritate față de valorile certificate în probele de sânge stabilizate.

Presupunând că calibrarea RBC este corectă, Tabelul 5 prezintă motivele posibile pentru ca valorile medii ale indicelui să se încadreze în afara toleranței de control.

Tabelul 5

Motive pentru a depăși valorile medii ale indicilor eritrocitari

Indici eritrocitari	Valoarea medie a indicelui	Valoarea medie a indicelui	Valoarea medie a indicelui	Valoarea medie a indicelui
MCHC	Sub graniță	Deasupra graniței	Deasupra graniței	Sub graniță
MCH	In limitele de toleranta	In limitele de toleranta	Deasupra graniței	Sub graniță
MCV	Deasupra graniței	Sub graniță	In limitele de toleranta	In limitele de toleranta
Cauză	MCV este prea mare	MCV coborât	Hgb este prea mare	Hgb este scăzut

Instrucțiuni pentru colectare, depozitare și transport

material biologic pentru cercetarea de laborator

Materialul biologic trebuie să fie în tuburi (recipiente) etichetate și însoțit de un formular de trimitere individual completat într-un singur exemplar. Este necesar să se completeze cu atenție și lizibil sesizarea, cu indicarea următoarelor informații: data, numărul eprubetei, denumirea unității sanitare care a trimis biomaterialul spre testare, numele medicului care a colectat materialul; Numele complet, vârsta și sexul pacientului, diagnostic preliminar; în timpul sarcinii – vârsta gestațională. Recepția materialului biologic: PCR și teste de sânge imunochimice- Cu 09:00 inainte de 18:00 cu excepția weekendurilor și a sărbătorilor. Studii bacteriologice- Cu 09:00 inainte de 11:00 cu excepția zilelor de vineri, weekend-uri, pre-vacanțe și sărbători legale.

pentru identificarea agenților patogeni prin metoda PCR

1.1.1. Biomaterialul este preluat din habitatul suspectat al microorganismelor și dezvoltarea infecției.

1.1.2. Cantitatea de material colectată trebuie să fie mică. Excesul de descărcare, mucusul și puroiul afectează negativ calitatea extracției ADN-ului și contribuie la degradarea ADN-ului în timpul depozitării și transportului.

1.1.3. Atunci când se introduce biomaterial prelevat de la un pacient cu o sondă cu un tampon de vată sau o perie într-un tub Eppendorf cu o soluție tampon, este necesar:

Mentine sterilitatea;

Înainte de a scufunda biomaterialul colectat pe tampon (perie) în soluție, ungeți-l pe peretele uscat al eprubetei, apoi umeziți tamponul (peria) în soluție și, rotind sonda, clătiți bine tot materialul din peretele eprubetei și tamponul (peria);

Dacă este posibil, strângeți tamponul de peretele eprubetei, îndepărtați sonda cu tamponul (peria) și închideți eprubeta.

1.2. Metode de colectare a biomaterialului pentru cercetarea PCR

1.2.1. Razuire. Pentru răzuire, se folosesc sonde sterile de unică folosință cu un tampon de bumbac cu adsorbție crescută sau „perii” mai rar - linguri Volkmann, linguri mici pentru urechi sau instrumente similare cu marginile ușor tocite. Folosind mișcări de răzuire, colectați materialul. Materialul studiat trebuie să conțină cel mai mare număr posibil de celule epiteliale și o cantitate minimă de mucus, sânge și exudat. Adăugați materialul într-un tub Eppendorf steril cu soluție tampon (vezi secțiunea 1.1.).

Razuire din canalul cervical: Înainte de a lua o răzuire, este necesar să îndepărtați excesul de mucus cu un tampon de bumbac steril și să tratați colul uterin cu soluție salină sterilă. Introduceți sonda în canalul cervical la o adâncime de 0,5-1,5 cm, evitând contactul cu pereții vaginului și colectați materialul printr-o mișcare de răzuire (nu până când există sânge). Un număr mic de globule roșii din probă nu afectează rezultatul analizei. În prezența eroziunii cervicale, materialul este preluat de la marginea țesutului sănătos și alterat.

Razuire uretrale: introduceți sonda în uretră (la bărbați - la o adâncime de 2-4 cm) și colectați materialul cu mai multe mișcări de rotație. Cu o zi înainte de preluarea materialului este permisă provocarea (mâncare picant, alcool etc.). Se recomandă să vă abțineți de la urinare timp de 1-2 ore înainte de a preleva proba. Dacă există scurgeri purulente puternice, răzuirea trebuie luată nu mai târziu de 15 minute după urinare.

Razuire conjunctivala luate după anestezierea ochiului cu o soluție de dicaină 0,5%. După ce ați întors pleoapa, utilizați o sondă cu un tampon de vată (sau un bisturiu pentru ochi) pentru a colecta celulele epiteliale din conjunctivă.

Razuire rectala: Introduceți sonda în anus la o adâncime de 3-4 cm și colectați materialul printr-o mișcare de rotație.

1.2.2. Accident vascular cerebral. Folosind o sondă sterilă de unică folosință cu un tampon de vată sau o perie, luați o cantitate mică de scurgere (din bolta vaginală, faringe, nazofaringe etc.) și transferați-o într-un tub Eppendorf steril cu o soluție tampon (vezi secțiunea 1.1.).

1.2.3. Sânge. Pentru studiile PCR, sângele trebuie să fie nativ(nu ondulat).

Colectați sângele în mod aseptic, prin puncție venoasă, într-o eprubetă proprie (2-3 ml) cu anticoagulant EDTA ( Heparina nu poate fi folosită ca anticoagulant!), amestecați ușor, rotind ușor eprubeta.

Sângele cu EDTA este un biomaterial pentru următoarele grupuri de studii:

- cercetare genetică(momentul prelevării de sânge nu contează).

- identificarea agenților infecțioși(cele mai informative sunt probele prelevate în timpul frisoanelor, febrei, adică probabil în timpul viremiei sau bacteriemiei).

1.2.4. Urină. Colectați prima urină sau la mijlocul dimineții într-o cantitate de cel puțin 10 ml într-un recipient steril, gol, cu capac bine înșurubat. Dacă colectarea urinei se efectuează în timpul zilei, atunci înainte de aceasta, pacientul nu trebuie să urineze timp de 1,5-3 ore.

1.2.5. Spută. Dimineața, igienizați gura și gâtul (clătiți cu o soluție de bicarbonat de sodiu). Colectați spută într-o sticlă goală, sterilă, cu gură largă.

1.2.6. Biopsie. Materialul este preluat din zona în care ar trebui să fie localizat agentul infecțios, din țesutul deteriorat sau din zona învecinată cu deteriorarea. Puneți proba de biopsie într-un tub Eppendorf steril cu soluție tampon.

1.2.7. Saliva, suc gastric, lichid cefalorahidian, lichid sinovial. Saliva (1-5 ml), suc gastric (1-5 ml), lichid cefalorahidian (1-1,5 ml) - se pune intr-un tub steril (recipient) gol.

1.2.8. Suc de prostată. După masajul glandei prostatei, sucul este colectat într-o cantitate de 0,5-1 ml într-un tub steril (recipient) gol. Dacă este imposibil să obțineți suc, imediat după masaj, colectați prima porție de urină într-o cantitate de cel mult 10 ml (această porție conține suc de prostată).

1.2.9. Spălări, lavaj bronhoalveolar (BAL). Se utilizează un tampon de bumbac steril și 5-7 ml de soluție fiziologică pentru a clăti, de exemplu, de la vârful unui endoscop sau bronhoscop, și puneți 0,5-5 ml de clătire într-un tub steril (recipient) gol.

1.2.10. Fecale. O sondă cu un tampon de bumbac este plasată în interiorul scaunului și se întoarce ușor, captând o cantitate mică de material. Materialul este apoi plasat într-un tub Eppendorf steril care conține o soluție tampon.

1.3. Reguli de depozitare a materialului biologic pentru cercetarea PCR

1.3.1. Pete, răzuire:

La frigider (+4ºС - +8ºС) până la 7 zile;

În congelator (-20ºС) până la 14 zile (este permisă o singură dezghețare!).

1.3.2. Urină: la frigider (+4ºС - +8ºС) nu mai mult de 1 zi;

1.3.3. Sânge cu EDTA: în frigider (+4ºС - +8ºС) - pentru a determina agenți infecțioși - nu mai mult de 1 zi; pentru cercetare genetică – până la 4 zile. Nu poate fi înghețat.

1.3.4. Spută

1.3.5. Biopsii:

În compartimentul frigider (+4ºС - +8ºС) nu mai mult de 1 zi,

La congelator (-20ºС) până la 2 săptămâni.

1.3.6. Suc de prostată: la frigider (+4ºС - +8ºС) timp de cel mult 1 zi.

1.3.7. Lichid sinovial: la frigider (+4ºС - +8ºС) timp de cel mult 1 zi.

2. Reguli pentru colectarea, depozitarea și transportul sângelui

pentru studii imunochimice

2.1.1. În ajunul recoltării sângelui, evitați activitatea fizică, situațiile stresante, procedurile fizioterapeutice, luarea de medicamente (cu excepția cazurilor de medicamente prescrise de medic), contraceptivele orale, consumul de băuturi alcoolice și alimente grase. Nu fumați imediat înainte de test.

2.1.2. Când se studiază funcția glandei tiroide în timpul tratamentului cu medicamente care conțin hormoni tiroidieni, studiul se efectuează la 24 de ore după ultima doză de medicament; Cu 2-3 zile înainte de a lua sânge, evitați să luați medicamente care conțin iod.

2.1.3. Când studiați PSA cu o săptămână înainte de test, excludeți orice manipulare a glandei prostatei.

2.1.4. Sângele se ia dimineața, pe stomacul gol (pentru a evita chiloza, adică turbiditatea serului), în condiții de repaus fiziologic. Înainte de recoltarea sângelui, pacientului trebuie să i se odihnească 15 minute.

2.1.5. Sângele se prelevează în camera de tratament a unei unități sanitare, cu pacientul în poziție „șezând” sau „întins”, din vena ulnară cu respectarea regulilor de asepsie și antisepsie. Sângele este colectat într-un tub steril, într-o seringă monovet sau într-un sistem de colectare a sângelui (Vacutainer®, Vacuette®).

2.1.6. Pentru a obține ser, sângele venos este lăsat să se depună până când se coagulează complet. După formarea unui cheag de fibrină, acesta din urmă este separat de pereți cu o baghetă de sticlă sterilă, strict individuală pentru fiecare probă, tubul este centrifugat la 3000 rpm timp de 15 minute. * .

* Seringile Monovet și sistemele de colectare a sângelui (Vacutainer®, Vacuette®) sunt centrifugate fără manipulare prealabilă.

2.1.7. Supernatantul galben (serul) este pipetat cu grijă într-un tub gol cu ​​capac (5 ml).

2.2. Reguli de păstrare a sângelui și a serului pentru studii imunochimice

2.2.1. LAnivel: la frigider (+40C - +80C) timp de 1 zi.

2.2.2.Sersânge:

La frigider la o temperatură de +40C - + 80C timp de 4 zile;

La congelator la -200C timp de 2 săptămâni.

Este permisă o singură dezghețare!

ATENŢIE! Subiectul examinării este serul care nu conține amestecuri de globule roșii, excrescențe bacteriene, chil sau hemoliză. Dacă oricare dintre aceste semne este prezent, serul este distrus și este prescrisă o extragere de sânge repetată.

2.3. Reguli pentru colectarea și stocarea sângelui pentru testarea anticoagulantului lupus

Și studii de coagulare

2.3.1. Sângele se ia dimineața pe stomacul gol din vena ulnară, respectând regulile de asepsie și antisepsie în ziua studiului. Pentru a preveni activarea coagulării sângelui, compresia venelor nu trebuie să depășească 1 minut .

2.3.2. Dacă studiul este prescris în timp ce luați medicamente care afectează coagularea sângelui, acest lucru trebuie menționat în sesizare.

2.3.3. Sângele este colectat într-un tub special care conține citrat de sodiu, la marcaj. Nerespectarea acestei reguli modifică raportul sânge/anticoagulant, ceea ce poate afecta negativ acuratețea rezultatului.

2.3.4. În termen de 1 oră după extragerea sângelui, tubul trebuie centrifugat la 3000 rpm timp de 15 minute.

2.3.5. Depozitare plasma: pana la 6 ore la o temperatura de +40C - +80C sau pana la 2 saptamani la o temperatura de -200C.

2.4. Reguli pentru colectarea și stocarea sângelui pentru studiul hemoglobinei glicozilate (glicozilate).

2.4.1. Sângele se ia dimineața pe stomacul gol din vena ulnară, respectând regulile de asepsie și antiseptice.

2.4.2. Sângele este colectat într-un tub special care conține EDTA și amestecat fără probleme. Nu centrifugați!

2.4.3. Livrare la Laborator in ziua recoltarii sangelui.

2.4.4. Pastrare: pana la 2 saptamani la -200C.

2.5. Reguli pentru screening-ul prenatal

2.5.1. Momentul optim al studiului: trimestrul I – 10-13 săptămâni de sarcină; Trimestrul II – 16-18 săptămâni de sarcină.

2.5.2. La trimiterea la studiu, se completează o direcție specială, în care este necesar să se indice datele individuale ale gravidei: vârsta (zi/lună/an), greutatea, rezultatele ecografiei (CTR, BPR, numărul de fetuși, vârsta gestațională conform ecografiei (săptămâni + zile); dacă sunt disponibile - date despre dimensiunea pliului cervical - NT) cu indicarea obligatorie a datei ecografiei și a numelui medicului care a efectuat ecografia; prezența unor factori de risc suplimentari (fumat, diabet, FIV), etnie.

2.5.3. Pentru screening-ul pentru al doilea trimestru de sarcină, puteți utiliza datele cu ultrasunete efectuate în primul trimestru.

3. Reguli pentru preluarea, depozitarea și transportul biomaterialului

pentru cercetări bacteriologice

3.1. Biomaterialul este luat înainte de aplicarea unui curs de terapie antibacteriană sau nu mai puțin de o săptămână după finalizarea acestuia.

3.2. Pentru a preveni contaminarea probei cu microorganisme din mediul extern, biomaterialul prelevat este transferat într-un recipient gol sau eprubetă cu un mediu de transport în conformitate cu regulile standard de sterilitate: dopul eprubetei (containerului) este deschis/închis astfel încât că interiorul dopului rămâne steril; recipientele sterile nu rămân deschise mult timp.

3.3. Luarea biomaterialului pentru identificare micoplasme și ureaplasme, trichomonas, gonococi, microfloră nespecifică, culturi de bacterii anaerobe produs în tuburi de marcă cu mediu de transport de carbon:

Deschideți pachetul în locul indicat conform diagramei;

Scoateți eprubeta și deschideți-o, aruncați capacul;

Utilizați o sondă pentru a preleva o răzuire/ frotiu, o probă de biopsie sau pentru a înmuia sonda într-un fluid biologic;

Puneți imediat sonda cu biomaterialul în eprubetă (mânerul sondei este capacul eprubetei);

Numerotați eprubeta și indicați numărul în direcția.

3.4. Tipuri de material biologic pentru transport în mediul cărbunelui: frotiuri/răzuire, suc de prostată, lichid cefalorahidian, lichid sinovial, biopsie.

3.5. Depozitarea biomaterialului în tuburi cu mediu de transport pentru detectare micoplasme și ureaplasme, microfloră nespecifică pana in momentul transportului -

Livrare la Laborator in termen de o zi.

3.6. Depozitarea biomaterialului în tuburi cu mediu de transport pentru detectare Trichomonas, gonococi, culturi de bacterii anaerobe pana in momentul transportului - la temperatura camerei.

3.7. Biomaterial nativ: spută, suc de prostată, lichid sinovial de la 1 la 10 ml pentru detectarea microflorei nespecifice, micoplasmele și ureaplasmele sunt colectate într-un recipient steril gol.

Este necesar să anunțați Laboratorul cu o zi înainte sau în ziua preluării biomaterialului înainte de ora 11:00.

Depozitarea biomaterialului nativ până la transport - în compartimentul frigider (+4ºС - +8ºС).

Livrare la Laborator in ziua colectarii materialului.

3.8. Urina pentru testarea gradului de bacteriurie(porția medie de dimineață, 10-20 ml) se colectează într-un recipient steril, gol, cu capac, după o toaletă minuțioasă a organelor genitale externe.

Este necesar să anunțați Laboratorul cu o zi înainte sau în ziua preluării biomaterialului înainte de ora 11:00.

Depozitarea biomaterialului până la transport - în compartimentul frigider (+4ºС - +8ºС).

Livrarea la Laborator in ziua colectarii biomaterialului.

3.9. Sânge pentru sterilitate.

Cea mai informativă este o probă de sânge prelevată în timpul creșterii temperaturii.

Sângele se recoltează în sticle de marcă cu un mediu de transport în două faze (sticlă pentru adulți, biberon pentru copii). Deschideți cu grijă capacul de plastic al sticlei și ștergeți partea care iese din dop de cauciuc cu alcool 70%. În condiții sterile, luați sânge dintr-o venă cu o seringă și injectați-l printr-un dop de cauciuc în flacon (4 ml într-o sticlă pentru adulți, 2 ml într-o sticlă pentru copii).

Este necesar să anunțați Laboratorul cu o zi înainte sau în ziua preluării biomaterialului înainte de ora 11:00.

Depozitarea sângelui până la transport - la temperatura camerei.

Livrarea la Laborator in ziua colectarii biomaterialului.

3.10. Lapte matern pentru a identifica microflora nespecifică, aceasta este luată din fiecare sân într-o cupă sterilă separată, închisă ermetic. Etichetați cupele: „sânul stâng”, „sânul drept”.

Înainte de a colecta biomaterialul, spălați sânii cu apă caldă și săpun, ștergeți cu un prosop curat, tratați cu grijă mameloanele și zona mameloanelor cu un tampon de vată umezit cu o soluție de alcool etilic 70% și uscați cu o cârpă sterilă (fiecare glanda este tratată cu un tampon separat). Primii 10-15 ml de lapte extras nu se folosesc pentru analiză. Exprimă a doua porție de lapte din fiecare sân într-o cană etichetată într-o cantitate de ~ 10 ml.

Este necesar să anunțați Laboratorul cu o zi înainte sau în ziua preluării biomaterialului înainte de ora 11:00.

Livrare la Laborator în termen de 2 ore din ziua în care este preluat materialul.

3.11. Fecale pentru disbacterioză.

Înainte de a preleva o probă, este interzis consumul de alcool timp de 3 zile și administrarea de antibiotice timp de 2 săptămâni. Scaunul trebuie obținut fără clisme sau laxative. Pentru copiii cu constipatie se poate folosi un sapun pentru un efect iritant. Fecalele sunt colectate într-un vas individual, spălate de dezinfectant. Folosind o lingură sterilă, luați 3-5 g dintr-o porție medie de fecale și puneți-o într-un recipient steril.

Este necesar să anunțați Laboratorul cu o zi înainte sau în ziua preluării biomaterialului înainte de ora 11:00.

Depozitare până la transport - depozitați recipientul cu biomaterial învelit în vată și hârtie pentru a păstra căldura.

Livrarea la Laborator in ziua colectarii biomaterialului.

4. Reguli pentru preluarea, depozitarea și transportul biomaterialului

pentru studii microscopice

4.1. De la fiecare pacient - 2 pahare(un pahar - de rezervă). Pe fiecare pahar - 3 puncte: vagin ( V), canalul cervical ( CU), uretra ( U). Aplicați mișcări astfel încât suprafața mată să fie în stânga, deasupra și de la ea - de la stânga la dreapta: v, c, u.

4.2. Marcajul (Nr.) de pe sticlă nu trebuie să se dizolve în alcool (puteți semna pe partea mată a paharului cu un simplu creion). Frotiurile trebuie fixate prin uscare la aer (30-60 min).

4.3. Ochelarii trebuie să fie marcați, împăturiți unul lângă altul, ambalați într-o pungă individuală, cu inscripția corespunzătoare (unitate medicală, numele complet al pacientului, numărul de pe sticlă).

4.4. Pachetul și trimiterea completată sunt trimise la Laborator.

5. Reguli pentru preluarea, depozitarea și transportul biomaterialului

5.1. Cu 24 de ore înainte de studiu, trebuie evitate dusurile, terapia intravaginală și actul sexual. Nu poți lua material în timpul menstruației. Cele mai informative sunt probele prelevate la 14-20 de zile după începerea menstruației.

5.2. Materialul este luat înainte de examinarea bimanuală, diferite teste de diagnosticare și înainte de a lua materialul pentru PCR. Materialul este luat fără un tratament preliminar al mucoasei vaginale.

5.3. O răzuire a mucoasei vaginale/cervicale este luată cu o perie de nailon Cervex-Brush, spatulă sau alt instrument și se întinde uniform pe sticlă, lăsând un capăt al sticlei curat (pentru marcare). Se ia un punct pe pahar și se dublează pe un alt pahar de rezervă (în total două pahare pe punct). Frotiurile trebuie fixate prin uscare la aer (30-60 min).

5.4. Ochelarii trebuie să fie marcați (Nr. și numele complet al pacientului), împăturiți unul lângă altul, ambalați într-o pungă individuală cu inscripția corespunzătoare (unitatea sanitară, numele complet al pacientului, Nr. pe sticlă).

5.5. Frotiurile uscate pot fi păstrate până la 6 zile la temperatura camerei.

5.6. Pachetul și instrucțiunile completate (fiecare punct are propria direcție care indică tipul de biomaterial) sunt trimise la Laborator.

Nu puneți direcția într-o pungă cu ochelari, nu înfășurați ochelarii în direcție!

Trimiteți-vă munca bună în baza de cunoștințe este simplu. Utilizați formularul de mai jos

Studenții, studenții absolvenți, tinerii oameni de știință care folosesc baza de cunoștințe în studiile și munca lor vă vor fi foarte recunoscători.

postat pe http://www.allbest.ru/

„Colegiul medical din Nijni Novgorod”

(GBOU SPO NU „NMK”)

Test

Tema: „Organizarea recepției, etichetării și înregistrării biomaterialului”

Efectuat:

student grupa 221-IV laborator.

Stepanychev M.N.

Profesor:

Belova M.N.

N. Novgorod 2016

Introducere

1. Partea teoretică

1.1 Înregistrarea direcțiilor

1.2 Moduri de cercetare de laborator

1.3 Condiții de depozitare și transport al materialului pentru cercetarea clinică de laborator

1.4 Domeniul de aplicare

1.5 Organizarea procesului de transport al biomaterialului prin curier și responsabilitatea curierului

1.6 Recepția biomaterialului în laborator

1.7 Transfer de biomaterial și trimiteri către departamentele relevante ale laboratorului

1.8 Înregistrarea formularelor de comandă de către operatori

2. Partea practică

Concluzie

Introducere

Testele de laborator sunt cei mai sensibili indicatori ai stării pacientului. Specialiștii în diagnosticare de laborator clinic și-au dat seama de mult că mulți factori pot afecta rezultatele testelor de laborator. Printre acești factori: mostre de biomaterial livrate corect și proiectate în mod competent și documentația însoțitoare. În absența unor astfel de informații de sprijin (factori care influențează testele de laborator), clinicianul poate interpreta greșit rezultatul și poate lua măsuri greșite pentru pacient.

Scopul acestui test este de a atrage atenția asupra necesității revizuirii regulilor de primire și prelucrare a documentației materialului biologic. Aplicarea corectă a informațiilor ar trebui să conducă la o reducere a cercetărilor inutile, la reducerea costurilor și la o mai bună înțelegere a rezultatelor cercetării.

Ţintă:

Studiați organizarea recepției, etichetării și înregistrării biomaterialului.

Sarcini:

1. Studiul utilizării biomaterialului.

2. Întocmirea documentației sale.

1. Partea teoretică

În prezent, metodele de cercetare de laborator joacă un rol cheie în diagnosticarea și tratamentul bolilor. La examinarea pacienților, aspectele organizatorice ale diagnosticului de laborator, asigurarea acurateței și corectitudinii testelor de laborator, utilizarea unor metode analitice stabile, fiabile din punct de vedere tehnic și controlul calității cercetării sunt de mare importanță.

Instituțiile medicale folosesc o gamă destul de largă de metode de laborator și, împreună cu tehnici de rutină unificate, sunt utilizate și metode moderne de cercetare, foarte specifice și informative.

Introducerea unor metode de laborator foarte specifice pentru diagnosticarea bolilor în practica medicală necesită standardizare în toate etapele procesului de diagnostic.

Ponderea erorilor din stadiul preanalitic în numărul total de erori de laborator variază de la 50% la 95%. Erorile care apar în stadiul preanalitic al cercetării de laborator devalorizează întregul curs ulterioar al cercetării de laborator, duc la pierderea unor fonduri semnificative și discreditează metodele de laborator în ochii medicului curant din cauza nefiabilității rezultatelor obținute.

Pentru toate tipurile de cercetare de laborator, etapa preanalitică combină un set de procese înainte de analiza propriu-zisă de laborator, care constă în:

· pregătirea temeinică a subiectelor;

· obținerea de biomaterial (sânge, urină etc.);

· transportul biomaterialului la laborator;

· prelucrarea primară a biomaterialului în laborator;

· distribuirea și depozitarea biomaterialului în laborator.

Sarcina principală a acestor etape ale procesului preanalitic este de a asigura stabilitatea (siguranța) componentelor biomaterialelor luate pentru cercetare și de a minimiza influența diferiților factori care modifică calitatea acestora.

În acest sens, se are în vedere etapa preanalitică.

1.1 Înregistrarea direcțiilor

Când luați material, trebuie să completați corect instrucțiunile. Tuburile de testare și documentele și etichetele însoțitoare nu trebuie amestecate. Compartimentul și numărul de serie sunt indicate pe tub. Pe eprubeta cu sânge pentru a determina grupul și afilierea Rh - în plus numele pacientului.

În direcția de analiză la luarea biomaterialului, trebuie să indicați: (toate datele ținând cont de ordinul Ministerului Sănătății al Republicii Belarus din 28 septembrie 2007 nr. 787 privind formularele de documentație medicală primară)

· datele pacientului - nume, prenume, patronimic, data nașterii, sex, adresă, număr istoric medical, diagnostic.

· numele medicului care a trimis biomaterialul spre analiză;

data și ora preluării biomaterialului;

· dați o scurtă descriere a biomaterialului trimis (indicați tipul de biomaterial); nu se va examina materialul care nu corespunde celui declarat - de exemplu, saliva în loc de spută, ser în loc de plasmă;

· caracteristici ale colectării biomaterialului (locul de recoltare - pentru sânge, pentru urină - volum, porție, timp de recoltare);

· toate studiile necesare, și nu doar un „test de sânge biochimic”.

Trimiterea pentru analiză este semnată de medic.

Evitați dublarea testelor.

1.2 Moduri de cercetare de laborator

Tot sângele trebuie furnizat numai în tuburi de centrifugă, curate chimic, luate în laborator. Sângele pentru cercetare în modul de analiză de urgență ar trebui să fie livrat separat și nu așezat pe masă împreună cu testele programate fără avertisment. Angajatul departamentului care a livrat testul urgent trebuie să se asigure că testul este acceptat de angajatul laboratorului.

Testele de urgență se efectuează în decurs de 2 ore, numai pentru pacienții în stare gravă, dacă este necesară intervenția de urgență. Pentru efectuarea unei analize urgente, sunt desemnați un asistent de laborator separat și un medic de diagnostic de laborator. Efectuarea cercetărilor în regim de analiză urgentă necesită un consum mai mare de reactivi și timp de lucru de specialitate și, ca urmare, costuri financiare mai mari.

În prezent, laboratorul de analize urgente efectuează următoarele analize de sânge în regim de urgență:

Determinarea concentrației hemoglobinei

Calculul hematocritului

· Numărarea numărului de globule roșii

· Număr de leucocite

· Număr de leucocite

Numărul de trombocite

Analiza de gardă se efectuează în timpul zilei de lucru - pentru pacienții nou internați sau când starea pacientului se înrăutățește și nu necesită intervenție de urgență.

Notă: Valorile normale de laborator se referă la probele de post. Prin urmare, interpretarea rezultatelor cercetărilor de urgență și de rutină nu poate consta într-o simplă comparație cu valorile normale.

Studiile planificate sunt toate studiile programate cu o zi înainte, iar materialul pentru care ajunge la laborator între orele 7 și 9. Timpul de execuție este de până la 6 ore; în unele cazuri, este necesară o procedură analitică mai lungă.

Examinarea de laborator a angajaților se efectuează la îndrumarea medicului responsabil cu examinarea medicală a angajaților. În toate celelalte cazuri, examinarea este oferită pe bază de plată.

1.3 Condiții de depozitare și transport al materialului pentru cercetarea clinică de laborator

Pentru a preveni infectarea profesională, orice fluid biologic trebuie considerat ca material potențial infecțios, respectând toate regulile relevante pentru manipularea acestuia în timpul transportului, depozitării și procesării. Biomaterialele provenite de la pacienți infecțioși trebuie să aibă etichetare specială și trebuie manipulate cu precauție extremă. Toate biomaterialele de la pacienți cu infecție HIV trebuie marcate în direcția „cod 120” cu indicarea obligatorie a numărului de istoric medical.

Fluidul biologic rezultat trebuie livrat la laborator cât mai repede posibil. Dacă este necesar să se determine starea de glucoză și acido-bază, sângele trebuie livrat imediat la laborator.

În toate etapele de transport și procesare, sângele trebuie păstrat în tuburi, închise cu capace, pentru a preveni evaporarea și contaminarea cu microbi și diverse substanțe externe.

La livrare, tuburile trebuie poziționate vertical, cu capacele sus, ceea ce ajută la conservarea probelor și accelerează formarea unui cheag la primirea serului, reduce tremuratul în timpul transportului și riscul de hemoliză.

Eprubetele nu trebuie umplute până la refuz. Sângele integral obținut fără anticoagulante nu trebuie refrigerat înainte de livrare la laborator pentru a evita hemoliza.

Centrifugarea se efectuează nu mai târziu de 1 oră după luarea biomaterialului.

1.4 Domeniul de aplicare

Această procedură standard de operare (denumită în continuare POS) definește procedura de primire, înregistrare a materialului biologic care intră în laborator din sala de proceduri a (denumirea instituției) și a altor instituții deservite de laborator, precum și identificarea neconcordanțelor și eliminarea acestora.

Acest SOP este destinat asistentului de laborator și operatorului de laborator.

1.5 Organizarea procesului de transport al biomaterialului prin curier și responsabilitatea curierului

Temperatura din frigider, care este indicată pe afișajul din interiorul mașinii, este înregistrată de curier în jurnalul „Jurnalul condițiilor de temperatură în frigiderele auto”, iar în acest jurnal curierul indică numele complet, plăcuța de înmatriculare a mașinii. și ora de plecare a mașinii pentru biomaterial imediat înainte de deplasarea la instituții .

Curierul, ajuns la unitatea sanitară, merge la registratura acestei instituții, de unde ridică containere cu diverse biomateriale. Fiecare recipient conține numele instituției și tipul de biomaterial (sânge, urină, fecale, lame cu frotiuri, răzuire). Curierul plasează recipientele orizontal în frigiderul mașinii, așa cum se arată în fotografie.

Curierul este responsabil pentru integritatea containerelor, siguranța acestora, pentru asigurarea condițiilor corespunzătoare de temperatură în frigiderul mașinii (+4 - +8 o C), precum și pentru siguranța biomaterialului livrat de la instituții către laborator. În timpul călătoriei, curierul monitorizează temperatura din frigiderul mașinii, care este afișată pe un afișaj instalat în interiorul mașinii.

1.6 Recepția biomaterialului în laborator

Temperatura indicată pe afișajul din frigiderul mașinii la momentul scoaterii containerelor este notă de curier în jurnalul „Jurnalul condițiilor de temperatură în frigiderele auto” în coloana corespunzătoare numărului de stat al mașinii. Și tot în același jurnal, șoferul indică ora sosirii mașinii cu biomaterial de la instituții.

Curierul predă asistentului de laborator medical recipiente etichetate cu probe de sânge, frotiuri și răzuire.

În birou, un asistent medical de laborator deschide capacul recipientului și scoate tuburi cu sânge, lame cu frotiuri și răzuire și mape cu instrucțiuni de cercetare.

Sortează tuburile de sânge separat în rafturi, în funcție de tipul de tuburi (biochimice, hematologice și de coagulologie) și de numele instituțiilor care sunt indicate pe rafturi.

1.7 Transfer de biomaterial și trimiteri către departamentele relevante ale laboratorului

În cabinet, un asistent medical asistent de laborator așează rafturi cu eprubete pentru studii biochimice, imunologice, coagulologice în recipiente marcate „pentru transferul biomaterialului” și le duce la centrifugare.

Paramedicul-laborator sună la secțiile de hematologie și PCR pentru ca asistenții paramedic-laboratori din secțiile relevante să preia biomaterialul.

În continuare, el transferă trimiteri pentru cercetare către operatorii de înregistrare.

1.8 Înregistrarea formularelor de comandă de către operatori

Procedura de inregistrare:

- operatorul citeste codul de bare cu un scanner, lipit pe formularul de directie;

- apoi operatorul introduce în LIS datele pașaportului pacientului: numele complet, data nașterii, adresa de domiciliu și alte date: sursa comenzii (asigurare medicală obligatorie, asigurare voluntară de sănătate, plata în numerar, examen clinic), numărul instituției, secție, numele complet al medicului care a dispus examinarea, diagnosticul, codul MES (standard medical si economic).

- dupa aceasta, operatorul introduce in LIS acei indicatori pe care i-a prescris medicul curant si salveaza comanda generata in LIS.

2. Partea practică

Spitalul Clinic Orășenesc nr. 40 a fost deschis în 1966 și reprezintă în prezent singurul complex medical multidisciplinar din Nijni Novgorod, care include: un spital, o maternitate, o clinică prenatală, o clinică pentru copii și adulți. Este baza clinică principală a Departamentului de Chirurgie, un centru de pregătire avansată și recalificare profesională a specialiștilor, Academia Medicală de Stat Nijni Novgorod, care funcționează pe baza spitalului de la deschidere. O caracteristică funcțională a Spitalului nr. 40 este primirea non-stop a pacienților cu aproape orice patologie în cazuri de urgență. Ambulanța livrează peste 100 de pacienți zilnic.

Spitalul și diviziile sale structurale au creat toate condițiile necesare pentru a oferi asistență în timp util pacienților și tratament de înaltă calitate. Metodele tradiționale sunt folosite și îmbunătățite cu încredere aici, iar cele mai recente tehnologii medicale sunt introduse în mod activ. Echipamente moderne de diagnosticare sunt folosite peste tot. În ultimii doi ani, în cadrul programului de modernizare a asistenței medicale, spitalul a primit 216 unități de echipamente medicale, inclusiv echipamente moderne de diagnostic endoscopic, de laborator și ecografie, care au făcut posibilă efectuarea unor intervenții mai complexe în hepatopancreatologie, coloproctologie și flebologie.

Specialiști de renume iau parte activ la seminarii, conferințe și simpozioane specializate la nivel rus și internațional. biomaterial clinic de laborator

Spitalul orășenesc nr. 40 este o bază clinică largă în care dezvoltările și tehnicile științifice moderne sunt aplicate în practică. Aici s-a desfășurat o muncă în comun de mult timp și fructuoasă cu Departamentul de Chirurgie al Centrului de Formare Avansată și Recalificare Profesională a Specialiștilor din cadrul Academiei Medicale de Stat Nijni Novgorod. Organizatorul său, profesorul Igor Leonidovich Rotkov, a devenit fondatorul școlii de chirurgie, la care au participat aproape toți chirurgii spitalului și astăzi continuă să-și dezvolte experiența acumulată, introducând noi dezvoltări și tehnici. Pe baza spitalului a fost creat un centru flebologic orășenesc. De câteva decenii, Departamentul de Chirurgie Pediatrică a avut un departament științific de gastroenterologie pediatrică ca ramură a Institutului de Pediatrie Nijni Novgorod. Pe baza maternității există secții de obstetrică și ginecologie pentru formarea avansată a medicilor și formarea studenților NSMA. Aici specialiști din multe regiuni ale Rusiei își îmbunătățesc abilitățile. Munca comună a oamenilor de știință practicanți și a medicilor din spitale contribuie la creșterea abilităților lor, iar inovația într-o varietate de domenii ale medicinei ne permite să obținem rezultate unice în tratamentul pacienților.

Pe baza rezultatelor lucrărilor Spitalului Clinic Orășenesc Nr. 40, au fost susținute 9 lucrări de doctorat și 29 de candidați. Au fost primite peste 70 de certificate de drepturi de autor și brevete pentru metode de operare, diagnosticare și modele de utilitate dezvoltate de specialiștii spitalului.

Munca echipei de medici a fost foarte apreciată de acordarea Premiului orașului Nijni Novgorod în domeniul medicinei în 2012. Lucrarea este dedicată uneia dintre cele mai presante și complexe probleme ale chirurgiei - tratamentul flebotrombozei extremităților inferioare, în ultimii cinci ani de observare și acordarea de îngrijiri chirurgicale de urgență și planificate pacienților cu flebotromboză în condiții de centrul flebologic orăşenesc în baza Instituţiei de Sănătate de la Bugetul de Stat „Spitalul Clinic Orăşenesc Nr. 40”.

Maternitatea, care face parte din spital, are 205 paturi și este cea mai mare din regiunea Nijni Novgorod. În prezent funcționează ca centru regional perinatal, acceptând 4500-5000 de nașteri anual. Toate lucrările desfășurate de obstetricieni și ginecologi au ca scop reducerea numărului de cazuri de avort spontan și de sarcină post-termen, obținerea nașterii naturale și îmbunătățirea ratelor de supraviețuire a nou-născuților.

Din ianuarie 2010, între zidurile clinicii pentru adulți funcționează cu succes un Centru de Sănătate, recunoscut drept unul dintre cele mai bune la nivel regional. Experiența sa de lucru a fost prezentată de șeful Centrului la Forumul All-Russian - „O națiune sănătoasă este baza prosperității Rusiei”.

În 2012, pentru a crește accesibilitatea asistenței medicale în zonele îndepărtate, a fost organizat un cabinet de medic generalist care funcționează cu succes în structura clinicii pentru adulți.

Peste o mie de angajați ai instituției, inclusiv medici, asistenți medicali, asistenți de laborator, infirmieri, personal tehnic, cu munca lor asiduă, grija și căldura lor, creează o atmosferă de umanism și milă, care este caracteristică personalului instituției bugetului de stat. nr. 40.

Pe parcursul stagiului a fost stăpânit întregul proces de primire și înregistrare a biomaterialului.

1. Recepția biomaterialului și a formelor.

2. Studiul biomaterialului

3. Înregistrarea rezultatelor obținute pe un formular

4. Înregistrarea rezultatelor în jurnalele de testare

5. Eliminarea biomaterialului

Concluzie

Principala formă de control asupra organizării recepției, etichetării și înregistrării biomaterialului este inspecțiile externe și interne periodice. Dar această formă de control nu poate fi considerată eficientă. Problema controlului acestei etape a cercetării de laborator rămâne astăzi una dintre cele mai grave probleme ale medicinei moderne de laborator.

Cel mai eficient și eficient pas pare a fi crearea condițiilor standard pentru colectarea, transportul și depozitarea probelor biologice de la pacient (utilizarea vidului sau a altor sisteme). Introducerea în practică a unor astfel de sisteme nu afectează toate etapele cercetării de laborator și, în general, duce organizarea muncii de laborator la un alt nivel. Utilizarea lor nu numai că facilitează organizarea și promovează semnificativ standardizarea etapei preanalitice, dar creează și condițiile necesare implementării sistemelor moderne de laborator. Dacă sunt disponibile analizoare, acestea pot fi folosite ca tuburi primare, ceea ce simplifică foarte mult etapa analitică a cercetării de laborator.

Postat pe Allbest.ru

...

Documente similare

Obiectivele principale ale cercetării microbiologice în diagnosticul clinic de laborator. Echipamente pentru un laborator bacteriologic, tehnologie automatizata performanta de identificare a microorganismelor, standardizarea diagnosticelor microbiologice.

rezumat, adăugat 10.09.2010


Căile de transmitere a sifilisului - o boală infecțioasă cu transmitere sexuală care afectează pielea, membranele mucoase, organele interne, oasele și sistemul nervos, cu o schimbare secvențială a etapelor bolii. Vulnerabilitățile laboratorului dentar la infecții.

prezentare, adaugat 27.04.2016


Caracteristicile activităților unui laborator de diagnostic clinic în condiții moderne, evaluarea activităților personalului și tehnologiilor pentru creșterea eficienței acestuia. Descrierea activității personalului medical din laborator, elaborarea de recomandări de optimizare.

lucrare curs, adăugată 28.06.2016


Documente de reglementare ruse care reglementează producția de medicamente. Structura, funcțiile și sarcinile principale ale laboratorului de testare pentru controlul calității medicamentelor. Acte legislative ale Federației Ruse privind asigurarea uniformității măsurătorilor.

manual de instruire, adaugat 14.05.2013


Familiarizarea cu materialele folosite la fabricarea protezelor moderne. Studiul unei scheme de organizare automată a muncii care permite realizarea de proteze folosind tehnologia CAD\CAM. Beneficiile automatizării laboratoarelor dentare.

prezentare, adaugat 10.11.2015


Elementul principal al unui laborator dentar este masa de lucru a tehnicianului dentar. Designul acestei mese, echipamentul și iluminatul acesteia. Parametrii echipamentului utilizat în birou. Cele mai importante criterii de care depinde performanța unei mașini de turnare.

prezentare, adaugat 14.03.2016


Baza legală pentru efectuarea de studii clinice cu medicamente fundamental noi și neutilizate anterior. Principiile etice și juridice ale cercetării clinice, așa cum sunt formulate în Declarația de la Helsinki a Asociației Mondiale a Medicilor.

prezentare, adaugat 25.03.2013


Etapele de lucru ale unui laborator de microbiologie și timpul necesar pentru fiecare dintre ele. Documente normative. Cerințe generale pentru colectarea și livrarea de probe de material biologic pentru cercetare microbiologică. Interpretarea rezultatelor testelor.

prezentare, adaugat 26.04.2016


Dispoziții generale ale Ordinului ministrului sănătății al Republicii Kazahstan „Cu privire la aprobarea Instrucțiunilor pentru efectuarea de studii clinice și (sau) testarea produselor farmacologice și medicamentoase”. Principii pentru evaluarea etică a cercetării clinice.

prezentare, adaugat 22.12.2014


Familiarizarea cu principalele semne ale schizofreniei. Analiza stării psihice, somatice și neurologice a pacientului. Luarea în considerare a metodelor clinice de studiere a bolilor mintale. Caracteristicile generale ale testelor de laborator.

Activ

MU 4.2.2039-05

INSTRUCȚIUNI METODOLOGICE

4.2. METODE DE CONTROL. FACTORI BIOLOGICI ȘI MICROBIOLOGICI

Tehnologie pentru colectarea și transportul biomaterialelor la microbiologic
laboratoare

Data introducerii 2006-07-01

2. RECOMANDAT PENTRU APROBARE de către Comisia pentru standardele sanitare și igienice de stat din cadrul Serviciului Federal de Supraveghere a Protecției Drepturilor Consumatorului și Bunăstarea Omului la 6 octombrie 2005 (Protocolul nr. 3).

3. APROBAT ȘI INTRAT ÎN VIGOARE de către șeful Serviciului Federal de Supraveghere a Protecției Drepturilor Consumatorului și a bunăstării umane, medic șef sanitar de stat al Federației Ruse G. G. Onishchenko la 23 decembrie 2005.

5. INTRODUS PENTRU PRIMA Oara.

1 domeniu de utilizare

1 domeniu de utilizare

1.1. Orientările stabilesc regulile de colectare și transport a materialelor biologice către laboratoarele microbiologice în vederea îmbunătățirii calității rezultatelor cercetărilor de laborator și a organizării măsurilor antiepidemice și preventive, precum și a prevenirii infecțiilor nosocomiale în rândul personalului medical și al pacienților.

1.2. Orientările sunt destinate utilizării de către autoritățile și organizațiile Serviciului Federal de Supraveghere pentru Protecția Drepturilor Consumatorului și Bunăstarea Umanului și pot fi utilizate și de autoritățile și organizațiile din domeniul sănătății.

2. Prevederi generale

2.1. Obținerea de date fiabile privind identificarea surselor de infecție este necesară pentru organizarea la timp și eficientă a măsurilor antiepidemice și preventive, evaluarea nivelului de infecție în populație în timpul supravegherii epidemiologice.

2.2. Tehnica dezvoltată pentru colectarea și transportul materialelor biologice către laboratoarele de microbiologie va reduce nivelul erorilor preanalitice și va îmbunătăți calitatea laboratoarelor în obiectivarea rezultatelor.

2.4. Ghidurile pot fi utilizate la efectuarea supravegherii epidemiologice a rezistenței antimicrobiene a agenților infecțioși izolați și identificați în laborator, optimizarea utilizării medicamentelor și măsurilor antimicrobiene în domeniul prevenirii, controlului și limitării rezistenței la nivel local, regional și național.

3. Cerințe generale pentru recoltarea probelor de material biologic pentru cercetare microbiologică

3.1. Pentru a proteja personalul medical și pacienții de infecție atunci când colectează probe de biomateriale și le livrează la laborator, este necesar:

nu contaminați suprafața exterioară a vaselor la colectarea și livrarea probelor;

nu contaminați documentele de însoțire (directii);

minimizați contactul direct al probei de biomaterial cu mâinile lucrătorului medical care o colectează și o predă la laborator;

folosiți recipiente sterile de unică folosință sau aprobate pentru utilizare în aceste scopuri în modul prescris de recipiente (recipiente) pentru colectarea, depozitarea și livrarea probelor;

transportul probelor în cărucioare sau pachete cu cuiburi separate;

respectați condițiile aseptice pentru a preveni infectarea pacientului în timpul implementării măsurilor invazive;

colectați probe în recipiente sterile de unică folosință sau din sticlă (necontaminate cu biomaterial, nedeteriorate de fisuri, margini ciobite și alte defecte)

3.2. Probele de biomaterial trebuie colectate după cum urmează:

înainte de începerea terapiei antibacteriene, dacă acest lucru nu este posibil - imediat înainte de administrarea repetată (a lua) medicamente;

în cantitatea (greutate, volum) necesară efectuării analizei, deoarece o cantitate insuficientă de biomaterial pentru cercetare duce la rezultate false;

cu o contaminare minimă a materialului cu microfloră normală, deoarece prezența acestuia duce la interpretarea eronată a rezultatelor obținute, de exemplu, din studiul sputei, probe din nas, faringe (gât), organe genitale etc.

3.3. Atunci când colectați o probă, asigurați-vă că în laborator, la deschiderea recipientului cu biomaterialul, nu se formează niciun aerosol: probele de sânge și alte fluide corporale sunt transferate cu atenție dintr-o seringă fără formarea de spumă într-un recipient uscat și/sau umplut cu un mediu (anticoagulant).

3.4. În direcția pentru studiu indicați: numele de familie, prenumele, patronimul pacientului; anul nașterii; departamentul în care se află; număr istoric medical (carte ambulatoriu); diagnostic; material trimis pentru cercetare și obiective de cercetare; data și ora colectării materialelor (ore); medicamente antibacteriene (imune), dacă proba este prelevată pe fondul antibioticului și/sau al imunoterapiei; numele, prenumele, patronimul medicului curant (consultant) care trimite proba pentru testare. La trimiterea biomaterialelor obținute în timpul unei autopsii este indicată și secția în care a murit pacientul.

3.5. Înainte de recoltarea unei probe, în special atunci când se utilizează metode invazive, se ia în considerare probabilitatea riscului și beneficiului pentru pacient, precum și semnificația acestui tip particular de biomaterial în scopul obiectivării diagnosticului clinic și al evaluării terapeutice în curs sau planificate. măsuri.

4. Cerințe generale pentru livrarea probelor de biomaterial către laboratorul microbiologic

4.1. Toate probele colectate sunt trimise la laboratorul microbiologic imediat după primire, cu excepția cazurilor de utilizare a containerelor cu medii de transport aprobate pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în modul prescris.

Acest lucru este necesar pentru:

menținerea viabilității agenților patogeni și a posibilității de izolare a microorganismelor care necesită condiții speciale de cultivare (Haemophylus etc.);

prevenirea creșterii excesive a microorganismelor active și cu creștere rapidă;

menținerea raportului dintre concentrațiile inițiale de izolate în prezența asociațiilor microbiene în probă;

reducerea timpului de contact al probei cu unele antiseptice utilizate local, care pot avea activitate antibacteriană;

obiectivarea diagnosticului clinic al unei boli infecțio-inflamatorii și evaluarea rezultatelor terapiei.

4.2. Este permisă utilizarea metodelor alternative pentru a crește timpul necesar pentru livrarea biomaterialului în laborator.

Probele se păstrează la frigider la o temperatură de 2-8 °C, cu excepția cazurilor enumerate mai jos.

4.2.1. Când proba este depozitată într-un container de transport specializat (sistem de transport), aprobat pentru utilizare în modul prescris, care este un tub steril de unică folosință cu agar sau mediu de transport lichid și o sondă tampon montată într-un dop și ambalată steril împreună cu tubul . În astfel de recipiente, probele sunt păstrate la temperatura camerei (18-20 °C). Mediile de transport, cele speciale dense cu și fără cărbune activ, permit asigurarea păstrării viabilității microorganismelor care necesită condiții speciale de cultivare timp de 48-72 de ore.

Pentru testele pentru anaerobi și flora fecală, utilizați recipiente speciale cu mediu de transport, eprubete cu medii pentru izolarea Campylobacter și Helicobacter, omologate pentru utilizare în modul prescris. Astfel de medii creează o atmosferă anabiotică pentru microorganisme, care ajută la reducerea metabolismului acestora, inhibă creșterea și împiedică uscarea și acumularea de deșeuri.

Fiecare probă colectată într-un mediu lichid este bine amestecată cu mediul.

4.2.2. Când sângele este cultivat în bulion, apoi după obținerea probei se păstrează într-un termostat la o temperatură de 35-37 ° C.

Dacă probele sunt colectate în recipiente speciale pentru cercetări ulterioare într-un mediu în două faze, acestea trebuie păstrate la temperatura camerei (18-20 °C).

4.2.3. Când există o posibilă prezență a microorganismelor sensibile la temperatură (Neisseria sp.), probele sunt lăsate la temperatura camerei (18-20 °C).

4.3. Pentru a transporta probe testate pentru prezența aerobilor și anaerobilor facultativi, utilizați:

tuburi uscate sterile de unică folosință cu o sondă (tuburi) de tampon încorporată sau recipiente cu mediu de transport, aprobate pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în modul prescris; Este permisă folosirea tuburilor sterile din sticlă, sigilate cu dop permeabil la gaz cu o sondă tampon încorporată, preparate în laborator;

recipiente sterile de unică folosință cu capac filetat (sticlă cu dop permeabil la gaz) - pentru recoltarea probelor de urină, spută, fecale, lavaj bronho-alveolar, material de biopsie (bucăți de țesut);

steril de unică folosință cu capac filetat sau tuburi de sticlă - pentru colectarea lichidelor sterile, lavaj bronho-alveolar separat de drenaje sau răzuire;

vase Petri sterile - pentru colectarea probelor de păr sau pentru transportul răzuiturilor cu marcaje pe fundul vasului;

sonde speciale nazofaringiene și urogenitale sterile-tampoane cu axă de aluminiu (diametrul axei - 0,9 mm) și un mic tampon de bumbac sau viscoză la vârf (diametrul tamponului - 2,5 mm), montate într-un dop care etanșează un tub de sticlă steril de unică folosință - pentru probe din rinofaringe pentru B. pertusis si din uretra la barbati.

4.4. Pentru transportul probelor testate pentru prezenta anaerobilor se folosesc recipiente cu medii speciale de transport si eprubete cu mediu tioglicolat; eprubete cu medii pentru izolarea Campylobacter și Helicobacter, aprobate pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în conformitate cu procedura stabilită. Proba colectată într-un mediu lichid este bine amestecată cu aceasta. Pentru obținerea probelor se recomandă următoarele metode:

evacuarea de drenaj utilizată pentru aspirația activă a cavităților este aspirată cu o seringă sterilă cu un piston strâns într-un volum de 2-4 ml; se pune un ac steril acoperit cu un tampon de vată steril pe seringa umplută și se îndepărtează excesul de aer din seringă; un tampon de bumbac este aruncat într-o soluție dezinfectantă; se introduce capatul acului intr-un dop de cauciuc steril si in aceasta forma se livreaza seringa cu materialul la laborator;

conținutul focarelor de infecție și cavități, obținute prin perforarea acestora, se colectează într-un volum de 2-4 ml folosind seringi de 2-, 5-, 10-ml cu un piston strâns; excesul de aer este îndepărtat din seringă acoperind acul cu un tampon de bumbac steril, care este apoi aruncat într-o soluție dezinfectantă; acul se dezinfectează prin ștergere cu un tampon umezit cu alcool etilic 70%; Pentru etanșare, capătul acului este introdus într-un dop de cauciuc steril și în această formă seringa cu materialul este livrată la laborator.

La colectarea unui volum mare de material (3 ml sau mai mult), bacteriile anaerobe pot rămâne viabile timp de 24 de ore la temperatura camerei (18-20 ° C).

Dacă există doar câteva picături de descărcare, acesta este transferat dintr-o seringă într-un recipient mic sau într-o eprubetă cu mediu de transport imediat după primire (recipientele cu medii de transport sunt primite în laborator cu o zi înainte).

Dacă se suspectează o infecție anaerobă, bucăți de țesut (material de biopsie) sunt colectate în recipiente sterile de unică folosință cu capac filetat (permis într-un recipient de sticlă cu capac înfundat) și livrate imediat la laborator.

4.5. Pentru transportul probelor testate pentru prezența virușilor, se folosesc recipiente speciale cu mediu lichid pentru conservarea virușilor.

5. Mostre de diferite tipuri de biomaterial și mediul care înconjoară pacientul

tabelul 1

Sticlărie folosită pentru transportul probelor la laborator

Sursa și tipul materialului clinic	Produse utilizate pentru livrarea probelor
	Containere speciale de transport cu un mediu, cu sau fără neutralizatori de antibiotice și reactivi care distrug celulele sanguine, aprobate pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în modul prescris; mediu bifazic în sticle
sistem nervos central
Lichior	Tuburi sterile de unică folosință cu capac filetat; tuburi de sticlă sterile cu dop din celuloză sau din tifon de bumbac
Material pentru abcese cerebrale și material pentru biopsie pentru procesele inflamatorii din sistemul nervos central	O seringă cu un ac introdus într-un dop de cauciuc steril; o eprubetă cu mediu tioglicolat, închisă cu un dop de cauciuc steril; containere de transport cu un mediu pentru conservarea anaerobilor
Căile respiratorii inferioare
Material de biopsie a plămânilor și a traheei; sputa, expectorata si indusa natural; răzuirea din bronhii	Recipient steril de unică folosință cu capac filetat (pentru colectarea sputei); recipient din sticlă steril pregătit de laborator
Aspirat traheal, lavaj bronho-alveolar, spălături bronșice	Recipient steril de colectare a sputei de unică folosință cu capac filetat; tub de sticlă steril sigilat ermetic
Aspirat transtraheal și pulmonar	Containere speciale de transport cu un mediu pentru anaerobi; o seringă cu un ac introdus într-un dop de cauciuc steril; recipient cu mediu tioglicolat; recipient steril din plastic de unică folosință cu capac cu șurub; tub etanș etanș
Căile respiratorii superioare
Tampoane din nas, gât, nazofaringe, ureche externă	O sondă cu tampon steril de unică folosință montată într-un tub uscat steril (tubere) sau un recipient de transport cu mediul adecvat; vas de transport pentru virusuri; sticlă sterilă montată în laborator
Lavaj nazal, aspirat nazofagian	Recipient steril de unică folosință cu capac filetat; vas de transport pentru virusuri
Lichid obținut prin timpanocenteză, aspirat sinusal obținut prin aspirație cu ac	O seringă cu un ac, dezinfectată după manipulare folosind un tampon umezit cu alcool etilic 70% și înfipt într-un dop de cauciuc steril; puteți transfera materialul din seringă într-un tub steril de unică folosință sau de sticlă sau într-un vas special cu un mediu pentru transportul anaerobilor
Țesut obținut în timpul intervenției chirurgicale a nasului, faringelui, urechii	Recipient steril de unică folosință cu capac filetat; o eprubetă cu tioglicolat sau alt mediu de transport, închisă etanș cu un dop de cauciuc steril; tub steril de unică folosință din plastic sau sticlă bine închis
Razuri de la conjunctiva colțului ochiului	Se unge pe lamele de sticlă sterile, fără grăsimi; material care este luat într-un container special de transport cu un mediu sau inoculat într-un mediu nutritiv
Lichidul intraocular	Se unge pe lamele de sticlă sterile, fără grăsimi; material care este luat într-un container special de transport cu un mediu pentru anaerobi sau o seringă cu un ac pre-dezinfectat cu alcool etilic 70% introdus într-un dop de cauciuc steril
Evacuarea prelevată cu o tijă sterilă de sticlă sau un tampon de vată steril din membrana mucoasă a pliului de tranziție inferior, de la marginea pleoapelor, în caz de ulcer - din cornee (după anestezie), în caz de conjunctivită unghiulară - din colțurile pleoapelor	Un tub steril de unică folosință sau de sticlă cu bulion de zahăr, în care este instalată o sondă de tampon sau o tijă de sticlă sterilă, folosită pentru a preleva o probă; container special de transport cu mediu viral
Secret din sacul lacrimal	O sondă cu tampon steril de unică folosință montată într-un tub uscat steril (tubser) sau tub de sticlă
Sistemul genito-urinar
Cantitate medie de urină care curge liber; din canalul ileal folosit pentru a crea o vezică artificială; dintr-un cateter la pacienții de terapie intensivă. Înroșirea vezicii urinare. Probă obținută în timpul cateterismului uretral bilateral	Recipient de colectare a urinei steril de unică folosință cu capac filetat sau tub steril de unică folosință cu capac; sau un tub special de colectare a urinei de unică folosință. Când utilizați un tub de sticlă steril cu dop de celuloză sau tifon de bumbac, aveți grijă să nu înmuiați dopul cu materialul (volum de probă 10-20 ml)
Probă obținută prin aspirație suprapubiană	O seringă sterilă fără ac, închisă cu un dop de cauciuc steril; o seringă sterilă cu ac, dezinfectată în prealabil cu alcool etilic 70% și introdusă într-un dop de cauciuc
Material din organele genitale feminine
Lichide: amniotic, trompe uterine, Bartholin	Container special de transport cu mediu pentru anaerobi; o seringă fără ac, închisă cu un dop de cauciuc steril; o seringă cu un ac tratată cu alcool 70% și introdusă într-un dop de cauciuc steril (volum de probă 1-2 ml)
Probe din canalul cervical, uretra, vagin	O sondă-tampon sterilă de unică folosință, montată într-o eprubetă sterilă uscată (tubere) sau într-un recipient de transport cu un mediu special; o sondă tampon montată într-un dop de celuloză sau tifon de bumbac al unui tub de sticlă steril. O lamă cu un frotiu pregătit pentru studiul infecțiilor și virusurilor bacteriene cu transmitere sexuală. Tub cu mediu de transport cu cărbune activ pentru conservarea gonococilor timp de 48 de ore sau mai mult
Probe de material din endometru	Un recipient steril de unică folosință cu capac filetat sau o eprubetă sau un recipient de transport cu un mediu pentru anaerobi; sticlă sterilă
Materiale genitale externe	O seringă sterilă fără ac, închisă cu un dop de cauciuc steril; o lamă cu frotiu acoperit cu o lamă pentru determinarea T. pallidum; o sondă cu tampon montată într-un tub (tub) steril de unică folosință sau tub de sticlă; un tub special de transport cu un mediu cu cărbune activ pentru conservarea gonococilor și recipiente de transport pentru virusuri și chlamydia; frotiuri pe lamele de sticlă pentru a detecta alte infecții cu transmitere sexuală
Material din organele genitale masculine
Tampoane uretrale	O sondă-tampon pe o axă de aluminiu (sonda uretral-tampon), montată în tuburi sterile de unică folosință (tubser) sau din sticlă; un tub special de transport cu un mediu cu cărbune activ pentru conservarea gonococilor și vase de transport pentru virusuri și chlamydia; frotiuri pe lamele de sticlă pentru a detecta alte infecții cu transmitere sexuală
Ejaculare, spermatozoizi	Recipient steril de unică folosință cu capac filetat; tub sau tub steril, de unică folosință sau din sticlă
Materialul epididimului în epididimita	Un container special de transport cu un mediu pentru anaerobi sau un container cu un mediu tioglicolat; un recipient steril de unică folosință cu capac cu filet sau un tub de sticlă steril cu dop de celuloză sau tifon de bumbac
Leziunea penisului	O seringă fără ac, închisă cu un dop de cauciuc steril; o lamă cu un frotiu de T. pallidum acoperit cu o lamă; o sondă cu tampon montată într-un tub (tub) steril de unică folosință sau tub de sticlă; containere de transport pentru viruși și chlamydia; tampoane pentru a detecta alte infecții cu transmitere sexuală
Material pentru suspiciunea de gonoree
Frotiuri din anus, canal cervical, uretra, vagin	O sondă-tampon montată într-un tub steril de unică folosință (tubere) sau din sticlă; tub special de transport cu mediu de carbon activ pentru a păstra gonococii timp de 48 de ore sau mai mult
Tract gastrointestinal
Cavitatea bucală	O sondă-tampon montată într-un tub steril de unică folosință (tubere) sau din sticlă; recipient steril de unică folosință sau din sticlă pentru colectarea lichidului oral
Lavaj gastric sau lichid de lavaj; aspirat duodenal; proba obtinuta in timpul sigmoidoscopiei; material de biopsie rectală	Recipient steril de unică folosință cu capac filetat; un recipient steril special pentru colectarea sputei; recipient steril din sticlă; aspirat - într-o seringă sterilă cu ac, dezinfectată în prealabil și introdusă într-un dop de cauciuc steril
Tampon rectal	O sondă-tampon sterilă de unică folosință, montată într-o eprubetă sterilă uscată (tubere); sau un tub steril cu un mediu de transport special; tampon-sondă din material inoxidabil, montat într-un dop de celuloză sau tifon de bumbac al unui tub de sticlă steril
Fecale pentru prezența infecțiilor intestinale ("degrupare"), Helicobacter, Campylobacter	Tub steril cu un tampon în soluție salină cu glicerină; container de transport cu mediu pentru anaerobi în probe de fecale, cu medii speciale cu și fără cărbune activ pentru izolarea Campylobacter sp. şi Helicobacter sp.; sondă-tampon într-un tub uscat, steril de unică folosință (tubere); tub de sticlă steril montat cu o sondă tampon pe un fir metalic din titan, oțel, aluminiu. Nu este permisă folosirea unui tampon cu ax de lemn
Fecale pentru prezența disbacteriozei în funcție de compoziția generică și de specii a microbilor („pentru floră”)	Container special de transport cu mediu pentru anaerobi în probe de fecale, cu și fără mediu de carbon activ pentru izolarea Campylobacter sp. și Helicobacter sp., aprobat pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în conformitate cu procedura stabilită; sonda-tampon într-o eprubetă cu soluție salină cu glicerină într-un tub steril de unică folosință sau din sticlă; un recipient steril special de unică folosință cu capac cu șurub; recipient din sticlă montat în laborator
Fecale pentru prezența disbacteriozei cu contabilizarea cantitativă a microbilor izolați și identificați („pentru disbacterioză”)	Recipiente speciale sterile de unică folosință cu capac filetat și spatulă pentru colectarea materialului și prelevarea unei probe pentru cultură, având o greutate standard; recipient special din sticla sterila montat in laborator
Piele și țesuturi subcutanate
Ulcere, noduli (îngroșări nodulare), răni superficiale, superficiale (purulente; arsuri); răni profunde sau abcese, oase	Recipiente speciale sterile de unică folosință cu capac filetat; tuburi sterile cu dopuri, de unica folosinta sau din sticla, 5 ml; recipiente cu medii speciale pentru anaerobi
Exudatul țesuturilor subcutanate și moi; aspirat de țesut moale	O seringă sterilă fără ac, închisă cu un dop de cauciuc steril; o seringă cu ac, dezinfectată în prealabil cu alcool etilic 70% și înfipt într-un dop de cauciuc
Lichide corporale sterile, cu excepția sângelui, lichidului cefalorahidian, urinei (vezi mai sus)
Lichide
Pleurală, peritoneală, ascitică, articulară, sinovială	Recipient steril de unică folosință cu capac filetat; o seringă închisă fără ac sau cu ac, dezinfectată în prealabil cu alcool etilic 70% și introdusă într-un dop de cauciuc steril
Biomaterial pentru diagnosticul PCR
Sânge; alte fluide corporale	Tuburi de 1,5 ml sterile, de unică folosință, închise cu anticoagulant. Tubul este răsturnat de 3-5 ori pentru a amesteca proba cu anticoagulantul. Livrare la laborator - într-un suport din materiale care pot fi sterilizate în autoclavă
Material pentru biopsie; răzuire; spută și alte tipuri de biomaterial	Tuburi Eppendorf sterile uscate de unică folosință și altele similare. Livrare la laborator - într-un suport special din materiale care pot fi sterilizate în autoclavă
Mostre din mediul pacientului
Aer	Vase Petri sterile, de unică folosință (=90 mm) sau din sticlă (=100 mm) cu mediu nutritiv dens. Livrare la laborator în containere speciale de transport
Spălări de la obiectele din mediu care înconjoară pacientul
Teste pentru a determina sterilitatea
Sânge și componente sanguine din departamentul de colectare	Containerele cu materialul pregătit sunt livrate la laborator în containere speciale de transport
Spălări de la instrumente medicale, furtunuri ale echipamentelor utilizate în secțiile de terapie intensivă și anestezie, precum și în sălile de operație; mâinile personalului medical; lenjerie	Sonde cu tampon steril montate în tuburi transparente care conțin un mediu lichid limpede, incolor. Probele sunt livrate la laborator în rafturi din materiale care pot fi sterilizate în autoclavă.
Material chirurgical: tampoane, șervețele, turunde, tampoane de bumbac pe o axă de lemn	Eprubete sterile transparente cu dopuri care conțin un mediu lichid limpede incolor cu 3-5 bile de sticlă sterile. Probele sunt livrate la laborator în rafturi din materiale care pot fi sterilizate în autoclavă.
Material de sutură: catgut depozitat în sala de operație într-o soluție alcoolică de iod	Eprubetă sterilă (sticlă cu dop) cu soluție de neutralizare (hiposulfit de sodiu)
Fire de mătase, nailon, monomer sintetic depozitate într-o soluție de alcool în sala de operație	O eprubetă sterilă cu un dop care conține apă distilată sterilă ca lichid de spălare. Probele de material de sutură sunt livrate la laborator în rafturi care sunt supuse sterilizării într-o autoclavă.
Spălări din câmpul chirurgical al pacientului	Înainte de prelucrarea câmpului: în tuburi transparente umplute cu un mediu nutritiv lichid limpede. După prelucrarea câmpului: o eprubetă sterilă (sticlă cu dop) cu o soluție de neutralizare (hiposulfit de sodiu). Materialul este livrat la laborator în rafturi care sunt supuse sterilizării în autoclavă.
Teste pentru determinarea factorilor imunologici ai sistemului de apărare antiinfecțioasă (sistem de rezistență antiinfecțioasă a organismului - SAIR)
Sânge și alte fluide corporale pentru a determina factorii umorali de protecție	Seringi de unica folosinta-eprubete (vacutainere); tuburi sterile de unică folosință cu capac filetat; tuburi sterile de sticlă cu dopuri sterile din cauciuc, celuloză sau tifon de bumbac. Probele sunt livrate la laborator într-un suport special realizat din materiale care pot fi sterilizate în autoclavă. Când utilizați eprubete de sticlă cu dopuri din tifon de bumbac, nu le înmuiați în timpul transportului.
Sânge și alte fluide corporale pentru a determina factorii de protecție celulari	Tuburi sterile de unică folosință cu capac filetat; tuburi sterile de sticlă închise ermetic cu un dop de cauciuc steril. Tuburi de unică folosință cu anticoagulant, supuse centrifugării. Livrarea la laborator se realizează într-un suport special din materiale supuse sterilizării în autoclavă.
Frotiuri pentru determinarea antigenelor bacteriene și virale (de exemplu, dacă se suspectează infecții cu transmitere sexuală)	Lamă de sticlă sterilă, degresată; pentru T. pallidum, toboganul trebuie acoperit cu o lamela. Livrarea la laborator se efectuează într-un recipient de unică folosință sau în vase Petri sterile de unică folosință sau din sticlă în recipiente speciale

Notă. Specimenele de puroi, lichid și țesut trebuie transportate la laborator în recipiente speciale, sterile, de unică folosință, cu capac filetat. Sonde-sampoane - se usucă în tuburi (tuburi) sterile de unică folosință sau în recipiente cu mediu de transport, dacă materialul nu poate fi livrat la laborator imediat după prelevarea probei. În aceste scopuri, puteți utiliza medii de transport, incl. în tuburi de unică folosință, ambalate cu o sondă de tampon steril, aprobată pentru utilizare în Federația Rusă în conformitate cu procedura stabilită. Tampoanele cu sondă sunt produse (pregătite) folosind o serie de materiale: pentru tamponul în sine (tifon de bumbac, bumbac, viscoză, dacron), pentru axa tamponului de sondă (lemn, plastic, metal inoxidabil - titan, oțel, aluminiu) și medii cu agar dens: cu și fără cărbune pentru anaerobi.


Mulți anaerobi semnificativi din punct de vedere clinic, de exemplu, Clostridium perfringens, Bacteroides fragilis, sunt destul de toleranți la prezența oxigenului și sunt bine conservați în cantități mari de puroi, mostre de fluide și țesuturi corporale, precum și pe o sondă cu tampon în transport special sau mediu tioglicolat.

Mai sensibile la oxigen (de exemplu, fusobacterii) sunt, de asemenea, bine conservate într-o probă de material biologic, iar dacă materialul este inoculat în 2-3 ore de la momentul colectării, atunci nu este necesară o atenție specială metodei de livrare. Anaerobii care necesită condiții speciale de cultivare nu rămân viabili pe o sondă cu tampon într-un container de transport cu un mediu nedestinat livrării anaerobilor, cu excepția containerelor cu medii speciale de transport sau tioglicolat.

În același timp, aceste microorganisme cresc cu 5-7 zile mai mult decât timpul în care majoritatea laboratoarelor practice incubează vase însămânțate cu material pentru izolarea și identificarea aerobilor și anaerobilor facultativi. Din acest motiv, în laboratoarele practice obișnuite, pare imposibil să se testeze în mod obișnuit prezența anaerobilor folosind containere anaerobe speciale de transport cu medii și ne putem limita la tuburi cu mediu tioglicolat.

Pentru a colecta și transporta probe, utilizați medii, containere, instrumente și materiale aprobate pentru utilizare în Federația Rusă în conformitate cu procedura stabilită.

6. Reguli și tehnici de obținere a probelor din diverse tipuri de material biologic pentru cercetarea microbiologică

Se recomandă ca orice probă care necesită utilizarea metodelor invazive să fie obținută de la un pacient de către un medic (cu excepția unei probe de sânge care poate fi recoltată de o asistentă de procedură).

Dacă este necesară colectarea materialului folosind o sondă cu tampon pe o suprafață chirurgicală deschisă sau în cazul unei alte intervenții invazive, este permisă utilizarea sondelor cu tampon gata făcute cu un nivel internațional de siguranță de cel puțin Clasa IIA, aprobate pentru utilizare pentru acestea. scopuri în Federația Rusă în modul prescris.

6.1. Mostre de sânge

Probele pentru determinarea prezenței agenților biologici în sânge (bacteremie, viremie etc.) sunt obținute prin puncție venoasă a venelor periferice (de obicei venele cotului), arterelor sau din călcâiul nou-născuților.

Recoltarea unei probe din cateterele intravenoase sau intra-arteriale rezidente este permisă numai în cazurile de suspiciune de infecție asociată cateterului sau posibilitatea obținerii acesteia prin puncție venoasă.

6.1.1. În sepsis acut, meningită, osteomielita, artrită, pneumonie bacteriană acută netratată și pielonefrită, 2 probe sunt colectate din două vase sau două secțiuni ale unui vas de sânge înainte de a începe terapia antibacteriană.

6.1.2. Dacă bănuiți prezența endocarditei și a sepsisului lent cu o concentrație mică (10-30 CFU/ml) a agentului patogen în circulație:

în prezența unui proces acut, se recoltează 2 probe din două secțiuni de vase de sânge (vase diferite) în primele 1-2 ore de creștere a temperaturii corpului (nu la vârful temperaturii!) și înainte de începerea terapiei;

în caz de curs subacut sau lent, se recoltează 3 probe în prima zi cu un interval de 15 minute sau mai mult. Dacă toate probele sunt negative, se colectează încă 3 în a doua zi după însămânțare;

la pacienții cu endocardită care primesc antibiotice, se recoltează 2 probe separate în fiecare din trei zile cu dinamică clinică pozitivă a terapiei;

pentru a confirma diagnosticul clinic de „endocardită infecțioasă”, dacă este imposibil să se obțină de la pacient numărul necesar de probe de sânge pentru analiza microbiologică sau dacă rezultatele culturii sunt negative, se trimit probe de sânge pentru a studia factorii imunologici de apărare a organismului sistem (sistem de rezistență antiinfecțioasă - SAIR); livrarea la laborator se efectuează în sticlă sterilă sau eprubete de unică folosință cu capac (dop), primite cu o zi înainte în laborator;

dacă pacientul suferă de boală cardiacă congenitală (CHD), trebuie amintit că CHD este prodromul endocarditei infecțioase, iar algoritmul de examinare pentru un astfel de pacient include determinarea factorilor imunologici ai CAIR.

6.1.3. La pacienții a căror terapie include antibiotice, se recoltează 6 probe în decurs de 48 de ore; probele trebuie recoltate imediat înainte de administrarea (luarea) următoarei doze de medicament.

6.1.4. Dacă un pacient are febră de origine necunoscută, inițial se recoltează 2 probe din diferite vase de sânge (două secțiuni ale vasului), apoi după 24-36 de ore, se recoltează încă 2 probe pe fondul creșterii temperaturii corpului (nu la vârful temperaturii!).

6.1.5. Tehnica de obținere a unei probe de sânge. Probele de sânge pentru cultură sunt recoltate de 2 persoane la patul pacientului sau în camera de tratament.

Pentru a obține o probă, trebuie să faceți următoarele:

dezinfectați zona pielii de deasupra vasului selectat pentru puncție: tratați pielea cu un tampon umezit cu alcool etilic 70%, apoi cu un alt tampon umezit cu o soluție de iod 1-2% sau alt dezinfectant aprobat pentru utilizare în aceste scopuri în în modul prescris, într-o mișcare circulară, începând din centru, timp de 30 s;

așteptați până când zona tratată se usucă. Nu este permisă palparea vasului după tratarea pielii înainte de introducerea acului;

atunci când lucrați cu flacoane cu medii duale: utilizați o seringă sterilă pentru a colecta 10 ml de sânge de la adulți, 5 ml de la copii; deschideți sticla peste flacăra unei lămpi cu alcool; adăugați sânge în flacon dintr-o seringă, după ce ați scos acul; ardeți gâtul și dopul sticlei în flacăra unei lămpi cu alcool, închideți sticla cu dop; Cu grijă, pentru a nu înmuia capacul sticlei, amestecați conținutul acestuia într-o mișcare circulară.

Când se utilizează sticle gata preparate cu medii și reactivi care neutralizează antibioticele și distrug celulele sanguine sau fără ele, aprobate pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în conformitate cu procedura stabilită, se obțin 10-30 ml de sânge de la adulți, 0,5 ml de la copii 3,0 ml.

în care:

în paralel cu dezinfectarea zonei pielii pentru perforare, capacele sticlelor sunt tratate cu alcool etilic 70% (soluția de iod nu este permisă pentru tratarea capacelor atunci când se lucrează cu sticle, de exemplu, Bactec, Vital și altele similare). , aprobat pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în conformitate cu ordinea stabilită);

sângele primit de la adulți în volume egale, după perforarea capacului recipientului, este introdus în recipientele „aerobe” și „anaerobe”; sângele primit de la copii - într-un biberon special pentru „bebe”, străpungând capacul recipientului.

6.1.6. După puncție venoasă și hemocultură într-un recipient cu un mediu pentru a preveni eventualele iritații (arsuri), iodul rămas este îndepărtat de pe pielea pacientului folosind un tampon umezit cu alcool etilic 70%.

6.2. Teste pentru procesele infecțioase și inflamatorii ale sistemului nervos central (SNC)

6.2.1. Lichior. 4,0-5,5 ml de lichid cefalorahidian obținut în timpul puncției lombare din spațiul subarahnoidian dintre vertebrele L3-L4, L4-L5 sau L5-S1, precum și în timpul puncției ventriculilor laterali ai creierului, se trimit la laboratorul de microbiologie pentru cercetare.

Recoltarea probelor se realizează prin umplerea lent a trei tuburi cu trei porțiuni de material pentru cercetare în laboratoare. Folosiți tuburi sterile cu capace strânse (de unică folosință cu dop sau sticlă cu dop de cauciuc steril).

Dintre cele trei tuburi cu material obținut în timpul puncției lombare, tubul cu conținutul cel mai tulbure este întotdeauna trimis, de regulă, acesta este al doilea tub din procesul de recoltare a probei.

La obținerea materialului prin puncția ventriculilor laterali ai creierului, lichidul cefalorahidian proaspăt extras din seringă, după ce a scos acul în prealabil, este introdus într-o eprubetă sterilă peste flacăra unei lămpi cu alcool, gâtul tubului și dopul sunt arse în flacăra lămpii cu alcool (atunci când se lucrează cu o eprubetă de sticlă sigilată cu dop de tifon de bumbac sau cauciuc) și eprubetă închisă cu un dop.

În toate cazurile suspectate de meningită, pe lângă lichidul cefalorahidian, se colectează material din focarele suspectate de infecție: tampoane din nazofaringe, urechea medie, probe de sânge, iar împreună cu lichidul cefalorahidian sunt trimise la laborator. O modalitate bună de a păstra meningococul pentru o perioadă lungă de timp (până la 48 de ore) este să luați materialul cu un frotiu cu o sondă cu tampon și să îl plasați într-o eprubetă cu un mediu de transport cu sau fără cărbune activ.

Lichiorul pentru cercetarea microbiologică este trimis imediat la laborator pe o pernă de încălzire pentru a menține o temperatură de 35-37 °C. Dacă acest lucru nu este posibil, alcoolul este colectat într-un recipient cu mediu de transport și lăsat la frigider (la o temperatură de 4-8 ° C) până dimineața, apoi livrat la laborator.

Dacă este necesar să se efectueze studii virologice, probele de lichid cefalorahidian sunt plasate într-un frigider la o temperatură de 2-8 ° C sau congelate sau depozitate la temperatura camerei folosind recipiente cu un mediu lichid special.

6.2.2. Material din abcese cerebrale. Având în vedere că în 90% din cazuri cresc anaerobii în probă, materialul este aspirat de la focar și trimis la laborator într-un recipient cu mediu anaerob, aprobat pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă în conformitate cu procedura stabilită, sau în seringa cu care a fost recoltată proba, după ce în prealabil a fost scos acul și închizând seringa cu un dop de cauciuc steril.

Eșantionul este livrat imediat după primire.

6.2.3. Material de biopsie. Probele se obțin în timpul intervenției chirurgicale și se introduc într-un recipient cu mediu anaerob sau într-un tub steril cu mediu tioglicolat, închis cu un dop de cauciuc steril.

Materialul este trimis imediat la laborator.

6.3. Teste pentru procesele infecțioase și inflamatorii ale ochilor

Majoritatea probelor obținute de la ochi sunt colectate de un oftalmolog. Aceste probe trebuie cultivate pe medii de cultură la patul pacientului sau în camera de tratament, sau în cabinetul medicului în timpul unei întâlniri, iar materialul inoculat trebuie transferat la laborator pentru cultivare, izolare, identificarea și determinarea sensibilității la antibiotice a agenților patogeni. . Probele prelevate folosind metode invazive și alte metode agresive sunt colectate în paralel cu un frotiu conjunctival, care în astfel de cazuri servește drept control.

Cu o zi înainte, 6-8 ore (noapte), toate medicamentele și procedurile sunt anulate.

Dacă există manifestări clinice specifice ale unui proces infecțios-inflamator sau medicul are suspiciuni, înainte de anestezie este necesar să se pregătească frotiuri pentru a determina chlamydia și virusurile și trimiterea medicamentelor la laborator. Pentru a păstra chlamydia și virusurile, materialul este colectat în recipiente cu medii de transport.

Evacuarea se colectează cu o tijă de sticlă sterilă sau cu o sondă cu tampon steril: frecat în două sau trei mișcări de-a lungul membranei mucoase a pliului de tranziție inferior, de la marginea pleoapelor; pentru un ulcer - din cornee (după anestezie), pentru „conjunctivită unghiulară” - din colțurile pleoapelor.

Secreția din sacul lacrimal este colectată cu o sondă cu tampon steril după un masaj ușor.

Materialul prelevat cu un baston și/sau cu sondă tampon se pune într-un recipient cu mediu de transport sau într-un tub steril de sticlă cu mediu lichid și se livrează la laborator, având grijă să nu se înmoaie dopul de celuloză sau tifon de bumbac al tub.

Când se utilizează sonde cu tampon, este de preferat să se utilizeze recipiente de unică folosință cu mediu de transport sau tuburi de sticlă sterile cu dopuri din tifon de bumbac umplute cu mediu steril.

Cele mai precise informații despre agentul cauzal al procesului inflamator pot fi obținute din analiza microbiologică a răzuirii.

6.3.1. Conjunctivită și blefaroconjunctivită. Cu o zi înainte, 6-8 ore (noapte), toate medicamentele și procedurile sunt anulate pentru pacienții din spital.

Probele conjunctivale sunt colectate folosind o sondă cu tampon de viscoză sau alginat de calciu sterilă, pre-umezită, amplasată într-un tub steril de unică folosință sau într-un tub de sticlă. Probele de la fiecare ochi sunt colectate cu tampoane separate folosind două sau trei mișcări circulare de-a lungul membranei mucoase.

Tuburile cu tampoane din fiecare ochi sunt etichetate „dreapta”, respectiv „stânga”, și imediat trimis la laborator.

Înainte de a obține o răzuire, se administrează 1-2 picături de anestezic, de exemplu, clorhidrat de proparacaină sau altul care este disponibil și aprobat pentru utilizare în aceste scopuri în modul prescris.

Folosind două sau trei mișcări scurte și ascuțite într-o direcție, răzuirile din conjunctivă sunt colectate folosind o spatulă sterilă specială. În timpul manipulării, ochiul trebuie să fie deschis.

Aveți grijă să nu vă atingeți genele atunci când colectați proba.

Pregătiți cel puțin 2 frotiuri din fiecare ochi, aplicând materialul pe o lamă de sticlă curată, fără grăsimi, într-o mișcare circulară pe o zonă cu diametrul de 1 cm.

Se fixează frotiurile timp de 5 minute în alcool metilic 95% într-un recipient special, bine închis.

Imediat se transferă în laborator eprubete cu sonde tampon și pahare cu frotiuri.

6.3.2. Keratită bacteriană. Cu o zi înainte, 6-8 ore (noapte), toate medicamentele și procedurile sunt anulate pentru pacienții din spital.

Se primesc 2 mostre din conjunctiva, asa cum este descris in paragraful 6.3.1, deoarece rezultatele culturii lor pot fi utile în determinarea sursei de contaminare a corneei (se folosește o probă dacă se suspectează o infecție fungică).

Dacă se suspectează o infecție virală, exudatul conjunctival și materialul obținut prin răzuire se pun într-un mediu de transport special pentru viruși.

Anestezia se efectuează conform indicațiilor de la punctul 6.3.1.

Colectați 3-5 răzuire folosind metoda descrisă în paragraful 6.3.1.

Puneți materialul colectat într-un tub mic (5 ml) steril cu capac filetat de unică folosință sau într-un tub steril de sticlă cu un dop de cauciuc umplut cu mediu.

Pregătiți 2-3 frotiuri pe o lamă de sticlă și, după uscare, fixați-le așa cum este descris în paragraful 6.3.1.

Imediat transferați tot materialul în laborator.

6.3.3. Endoftalmita bacteriană. Se recoltează o probă de lichid vitros (1-2 ml) prin aspirare cu ac fin și se obține o probă de vitrectomie.

Apoi faceți următoarele:

Din seringă, după îndepărtarea acului, conținutul este plasat într-un recipient steril de unică folosință cu capac cu filet sau o eprubetă bine închisă cu un dop de cauciuc;

proba de material poate fi lăsată în seringă prin eliminarea aerului și îndepărtarea acului, închiderea seringii cu un dop de cauciuc steril;

colectați o probă din conjunctivă, așa cum este descris la punctul 6.3.1;

tot materialul imediat trimis la laborator.

6.3.4. Celulita preseptală. Tratați pielea cu alcool etilic 70% și soluție de iod 1-2% sau iodoform sau alt dezinfectant disponibil aprobat pentru utilizare în modul prescris.

Dacă nu există o rană deschisă, pleoapa superioară sau inferioară este străpunsă pentru a colecta material.

Dacă există o rană deschisă, colectați o probă de material purulent cu o seringă și un ac.

Se prepară frotiuri pe o lamă de sticlă, așa cum este descris la punctul 6.3.1.

Transferați materialul colectat într-un recipient de transport cu medii pentru anaerobi sau lăsați-l într-o seringă, care, după îndepărtarea aerului din acesta și îndepărtarea aculului, se închide cu un dop.

Material colectat și frotiuri imediat trimis la laborator.

6.3.5. Celulita orbitală. Se colectează aspiratul din zonă conform metodei descrise mai devreme la punctul 6.3.2.

Se recoltează o probă din conjunctivă și se prepară frotiuri pe o lamă de sticlă, ca în paragraful 6.3.1.

Pentru livrarea la laborator, utilizați materialele descrise în clauza 6.3.3.

Se prelevează probe de sânge de la pacient conform metodei descrise la paragraful 6.1. Probele de sânge și tot materialul recoltat sunt trimise la laborator.

6.3.6. Inflamația glandei lacrimale (dacrioadenită).

Se colectează conținutul purulent folosind un tampon-sondă, ca în paragraful 6.3.1.

Nu utilizați metoda de aspirație cu ac, pentru a nu perturba integritatea glandei lacrimale.

Sonda tampon și lamele cu frotiuri sunt trimise la laborator.

6.3.7. Inflamația sacului lacrimal (dacriocistită). Se obține o probă din conjunctivă, ca în paragraful 6.3.1.

Masați și apăsați pe sacul lacrimal pentru a obține o probă de exudat pentru cultură și prepararea frotiurilor sau, folosind o altă metodă, colectați exudatul cu o seringă și un ac.

Puneți proba de exudat colectată în containere de transport așa cum este descris mai devreme și transportați-o la laborator.

6.3.8. Canaliculita. Apăsați pe interiorul pleoapei pentru a extrage puroiul.

În continuare, se lucrează conform metodelor prezentate mai devreme în această secțiune.

Dacă există o secție de specialitate (clinică) într-o organizație de tratament și profilactic, toate culturile sunt efectuate la patul pacientului folosind medii nutritive obținute în laborator. Materialul inoculat împreună cu frotiurile pregătite este transferat în laborator.

6.4. Teste pentru procesele infecțioase și inflamatorii ale urechii

6.4.1. Daca urechea externa este afectata, pielea este tratata cu alcool 70%, urmata de clatire cu ser fiziologic steril. Evacuarea din leziune se colectează pe o sondă-tampon sterilă de unică folosință a unui tub sau eprubetă cu mediu de transport, sau pe un tampon montat într-un tub steril de sticlă, închis cu dop, cu sau fără mediu special. Tamponul este plasat într-un tub și livrat la laborator.

6.4.2. Dacă urechea medie și internă sunt afectate, se recoltează punctate și alt material obținut în timpul intervenției chirurgicale. Articolele sunt livrate la laborator într-o seringă închisă cu aerul eliminat anterior. Probe de țesut - într-un recipient de transport cu un mediu pentru anaerobi, aprobat pentru utilizare în aceste scopuri în Federația Rusă, în conformitate cu procedura stabilită, sau într-un recipient steril de unică folosință cu capac cu filet. Este posibil să utilizați un tub de sticlă steril închis cu un dop de cauciuc steril.

6.4.3. Timpanocenteza membranei timpanice se efectuează pentru diagnosticul microbiologic al infecțiilor urechii medii numai în cazurile în care pacientul nu răspunde la terapia anterioară sau în cursul torpid al otitei medii catarrale, chiar și în absența vizuală a exudatului în sângele proeminent (semințele din nazofaringele sunt pozitive în mai puţin de 90% din cazuri).

Pentru a obține o probă, curățați canalul extern folosind un tampon umezit cu alcool etilic 70%, urmat de tratament cu ser fiziologic steril.

Folosind o seringă, colectați lichidul din cavitatea timpanică. Eșantionul este livrat la laborator într-un recipient steril de unică folosință cu capac cu filet sau într-o seringă închisă cu aer eliminat anterior.

Dacă timpanul este deteriorat, materialul este colectat cu o sondă tampon folosind o oglindă. Tamponul este plasat într-un tub steril de unică folosință (tubere) sau recipient cu mediu de transport (este permis un tub de sticlă steril cu sau fără mediu), iar în această formă este livrat la laborator.

6.5. Teste pentru procesele infecțioase și inflamatorii ale tractului respirator

6.5.1. Căile respiratorii superioare. Dacă un pacient este suspectat de difterie, tuse convulsivă, chlamydia, micoplasmoză, legioneloză sau gonoree, lucrătorii de laborator sunt informați înainte de livrarea probei, astfel încât să fie pregătiți să analizeze acest tip de material.

6.5.1.1. O probă din membranele mucoase ale secțiunilor anterioare ale cavității nazale este colectată cu o sondă cu tampon steril montată într-un tub steril de unică folosință (tubere) sau montată special într-un tub steril de sticlă:

scoateți tamponul din eprubetă, introduceți-l în nara dreaptă și, folosind mișcări de rotație, colectați material din aripile nasului și colțul superior al deschiderii nazale;

repetați manipularea pentru nara stângă;

Tamponul este plasat într-o eprubetă și livrat la laborator.

Probele obținute în acest fel sunt utile pentru determinarea transportului Staphylococcus aureus la lucrătorii medicali, prezența agenților patogeni ai infecțiilor nosocomiale, precum și pentru caracterizarea tulburărilor disbiotice ale membranelor mucoase ale tractului respirator superior în timpul unei examinări clinice cuprinzătoare imunomicrobiologice a pacienților. efectuate în laboratoare științifice și practice.

Dacă există focare de inflamație sau ulcerație în cavitatea nazală, materialul din leziunea (leziunile) este colectat cu un tampon separat.

6.5.1.2. Aspiratele nazofaringiene sunt colectate pentru a determina transportul agenților patogeni de streptococ pyogenes, meningococ, difterie și pertussis, precum și pentru studii epidemiologice ale rezistenței antimicrobiene a S. pneumoniae și H. influenzae:

aspira materialul din nazofaringe;

transferați materialul într-un recipient steril de unică folosință cu capac filetat sau un tub steril special cu dop de celuloză permeabilă la gaz sau din tifon de bumbac, având grijă să nu-l înmuiați cu o probă din materialul clinic.

6.5.1.3. Tampon nazofaringian. Materialul este colectat pentru a determina transportul meningococului și pentru a diagnostica tusea convulsivă.

Folosind mișcări ușoare de rotație de-a lungul pasajului nazal inferior, un tampon-sondă de bumbac, viscoză sau alginat de calciu este introdus în nazofaringe alternativ în ambele nări. În același timp, aripile nasului sunt apăsate pe tampon și pe septul nazal pentru un contact mai strâns cu membrana mucoasă.

Tamponul este plasat într-un tub steril și livrat la laborator.

6.5.1.4. Lavajul nazal este utilizat pentru a determina prezența nu numai a unei infecții bacteriene, ci și a unei infecții predominant virale.

Pacientul este avertizat să nu înghită în timpul procedurii.

Așezați capul pacientului într-o poziție sus-jos la un unghi de aproximativ 70°, injectați 5 ml de soluție salină sterilă în fiecare nară, pacientul trebuie să rămână în această poziție timp de 3-5 secunde.

Pentru a colecta material, coborâți capul pacientului înainte pentru a permite fluidului să curgă din nări într-un recipient steril de unică folosință sau aspirați lichidul introducând un dren de cauciuc în fiecare nară.

Puneți un volum egal de spălare într-un recipient care conține mediu de transport viral sau distribuiți această porțiune într-un recipient steril de unică folosință.

6.5.1.5. Sinus punctat. Folosind o tehnică de aspirare cu seringă, un medic sau otolaringolog special instruit, cu experiență, obține material din frontalul maxilar sau din alte sinusuri. Conținutul seringii se pune într-un recipient cu mediu de transport pentru anaerobi sau într-un tub steril cu mediu tioglicolat. Puteți lăsa materialul în seringă și, închizându-l cu un dop de cauciuc steril, să îl livrați la laborator.

6.5.1.6. Obținerea unei probe din membrana mucoasă a faringelui (faringe).

Nu este permisă colectarea de material din faringe (faringe) cu o epiglotă inflamată, deoarece procedura poate duce la obstrucție respiratorie gravă.

Când luați o probă din membrana mucoasă a faringelui (faringe), nu atingeți membranele mucoase ale obrajilor, limbii, gingiilor, buzelor cu un tampon și nu colectați saliva, deoarece acest material caracterizează membranele mucoase ale cavității bucale. cavitatea, adică partea superioară a tractului gastrointestinal.

Se recoltează un tampon din gât (faringe) pe stomacul gol sau la 3-4 ore după masă. Înainte de a lua o probă, pacientul trebuie să-și clătească gura cu apă caldă fiartă.

Pentru a obține o probă, utilizați o spatulă sau un tampon steril: scoateți un tampon de viscoză dintr-o eprubetă (eprubetă) sterilă de unică folosință sau folosiți un tampon preparat în laborator, montat într-o eprubetă sterilă din sticlă. Utilizarea unei sonde tampon cu cap de viscoză este de preferat, deoarece vascoza absoarbe mai putin lichid si mai mult material celular.

Cu o mână, apăsați limba pacientului cu o spatulă sterilă.

Cu cealaltă parte, colectează materialul, tratând alternativ amigdalele drepte, arcul palatin drept, amigdalea stângă, arcul palatin stâng și uvula cu un tampon; la nivelul uvulei, ating peretele posterior al faringele cu tamponul.

Probele obținute în acest fel sunt utile pentru determinarea prezenței unui agent patogen al infecției nosocomiale, precum și pentru caracterizarea tulburărilor disbiotice ale membranelor mucoase ale tractului respirator superior în timpul unei examinări clinice și imunomicrobiologice cuprinzătoare a pacienților efectuate în laboratoare științifice și practice. .

Dacă există focare de inflamație sau ulcerație pe membrana mucoasă, fiți deosebit de atenți atunci când colectați proba și colectați material suplimentar din leziune(le) cu un tampon separat.

Puneți tamponul într-un tub steril de unică folosință sau de sticlă și livrați-l la laborator.

6.5.1.7. Dacă se suspectează difterie, lucrătorii de laborator sunt informați, indicând diagnosticul în direcție.

În cazurile unui proces patologic respirator, materialul este colectat simultan din mucoasele nazofaringelui și faringelui conform metodelor prezentate mai devreme.

Dacă se suspectează o formă cutanată de difterie, materialul este colectat din piele, precum și din membranele mucoase ale faringelui (faringelui) și nazofaringelui, iar toate probele sunt livrate la laborator.

6.5.2. Căile respiratorii inferioare. Diagnosticul microbiologic al proceselor inflamatorii din tractul respirator inferior prezintă dificultăți serioase, deoarece În timpul procesului de colectare, proba poate fi contaminată cu microorganisme care colonizează tractul respirator superior. Aceasta nisa ecologica este destul de abundent contaminata cu microbi oportunisti, mai ales in prezenta disbacteriozei (calitativ - compozitia speciilor si/sau cantitativ - concentratia speciilor prezente in CFU/ml intr-un contingent de subiecti slabit si/sau imunocompromis).

Din acest motiv, probele de material din tractul respirator inferior sunt colectate cu grijă deosebită pentru a obține informații corecte despre agentul (agentii) etiologic(i). Atunci când se folosesc metode invazive de recoltare a unei probe (dacă acest lucru nu are loc în timpul intervenției chirurgicale), instrumentele folosite trec prin tractul respirator superior și există o posibilitate reală de însămânțare a locilor mai profundi cu microorganisme care locuiesc în tractul respirator superior.

6.5.2.1. Spută.

Sputa liber expectorată- se prefera colectarea dimineata.

Înainte de a colecta proba, pacientul, dacă este posibil, trebuie să se spele pe dinți și să-și clătească gura și gâtul cu apă caldă fiartă; dacă pacientul nu poate face acest lucru el însuși, atunci toaleta cavității bucale este efectuată de lucrătorii medicali. .

Pacientul este avertizat să nu colecteze saliva sau scurgerile nazofaringiene în recipient.

O probă de spută obținută ca urmare a unei tuse profunde este colectată într-un recipient steril special de unică folosință cu capac cu filet sau într-un borcan de sticlă steril special pregătit.

Proba de spută este trimisă la laborator.

Spută indusă (recomandată în principal dacă se suspectează Mycobacterium tuberculosis și Pneumocystis yiroveci)- se prefera colectarea dimineata.

Înainte de recoltarea probei, pacientul, dacă este posibil, trebuie să se spele pe dinți și să se clătească gura și gâtul cu apă caldă fiartă; Dacă pacientul nu este capabil să facă acest lucru singur, atunci toaleta cavității sale bucale este efectuată de personal medical.

Înainte de procedură, umeziți o periuță de dinți curată cu apă caldă fiartă și periați-o peste mucoasele ambilor obraji, limbii și gingiilor.

Clătiți activ gura pacientului cu apă caldă fiartă.

Folosind un inhalator, lăsați pacientul să înghită 20-30 ml de soluție salină sterilă 3-10%.

Colectați sputa indusă într-un recipient steril special de unică folosință cu un capac cu filet sau într-un borcan de sticlă steril pregătit corespunzător.

Proba este trimisă la laborator.

Concomitent cu proba de spută, o probă din faringe (gât) trebuie trimisă la laborator, recoltată după toaleta cavităţii bucale şi imediat înainte de recoltarea sputei, separată liber (expectorată) sau indusă.

6.5.2.2. Traheostomie și aspirate endotraheale. Traheostomia este colonizată de microorganisme în 24 de ore de la intubarea pacientului, drept urmare rezultatele studiului cultural au o semnificație clinică scăzută. Având în vedere cele de mai sus, rezultatele culturii obținute la pacienții intubați trebuie comparate constant cu datele clinice (de exemplu, febră sau apariția infiltratelor la radiografie).

Se recoltează probe de lavaj bronșic sau de lavaj bronhoalveolar, dacă este posibil, înainte de a se obține probe de răzuire sau biopsie. Regula este dictată de necesitatea de a evita excesul de sânge în lichidul rezultat, deoarece sângele poate modifica concentrația componentelor celulare și necelulare ale probei și poate afecta rezultatul analizei microbiologice.

Proba aspirată este colectată într-un recipient steril de unică folosință cu capac filetat, sau într-un recipient steril din sticlă montat corespunzător, sau într-un tub steril de sticlă de unică folosință cu dop sau livrat la laborator într-o seringă închisă cu aerul eliminat.

6.5.2.3. Probe obținute cu ajutorul unui bronhoscop. Lavaj bronhoalveolar (probă la alegere), lavaj bronșic (sensibilitate scăzută pentru diagnosticarea pneumoniei), răzuire bronșică (mai semnificativă decât lavaj), probele de biopsie transtraheală se obțin prin introducerea unui bronhoscop transnazal sau transoral la un pacient neintubat sau printr-un tub endotraheal la un pacient intubat.

Pentru a obține o probă de lavaj bronșic sau de lavaj bronhoalveolar:

Soluția fiziologică sterilă nebacteriostatică (oficială) se injectează cu o seringă prin canalul de biopsie al bronhoscopului în porții separate (volum total de la 5-20 la 100 ml);

Înainte de a introduce următoarea porție de soluție salină, aspirați cu atenție partea introdusă a seringii într-un recipient steril de unică folosință cu un capac cu filet sau într-un tub steril de unică folosință sau de sticlă cu dop sau lăsați-o într-o seringă închisă, după ce în prealabil ați îndepărtat aerul din acesta (de obicei 50-70% din soluția salină injectată este în lavaj);

fiecare porțiune aspirată este colectată într-un recipient separat;

La sfârșitul procedurii, probele obținute din aceeași zonă sunt combinate. Probele din diferite locații (de exemplu, lobul superior drept al plămânului și lobul inferior drept) trebuie combinate împreună numai după consultarea medicului curant;

în direcția indicați volumul total de soluție salină injectată.

Pentru a obține o probă de răzuire bronșică:

un cateter dublu telescopic cu capătul distal tratat cu polietilen glicol (sau alt reactiv adecvat) este introdus prin canalul de biopsie al bronhoscopului pentru a preveni contaminarea probei;

colectați materialul într-un recipient steril de unică folosință cu capac filetat sau într-un recipient de transport cu mediu anaerob sau într-un tub steril cu mediu tioglicolat închis etanș cu un dop de cauciuc steril;

livra materialul la laborator.

Pentru a obține o biopsie transbronșică, se prelevează o probă prin canalul de biopsie al bronhoscopului și, se plasează într-un recipient steril de unică folosință cu un capac cu filet cu o cantitate mică (1-2 ml) de soluție salină nebacteriostatică (oficială) sau într-o eprubetă cu mediu tioglicolat, închis ermetic cu un dop de cauciuc, este transferat în laboratoare

6.5.2.4. Probele de aspirat pulmonar. Pentru a colecta proba, un ac este introdus prin stern în infiltratul pulmonar sub controlul unui scaner de tomografie computerizată. Materialul este aspirat de la locul inflamației. Dacă există un infiltrat mare sau mai multe dintre ele, este necesar să se obțină mai multe probe din leziunile corespunzătoare sau mai multe probe dintr-o leziune mare. Materialul este transferat în laborator într-un recipient de transport cu mediu anaerob sau într-un tub de sticlă cu mediu tioglicolat sau într-un recipient de unică folosință cu șurub.

6.5.2.5. Probele de biopsie pulmonară. Dacă este posibil, obțineți bucăți de țesut de 1-3 cm.Dacă leziunea este mare sau sunt mai multe, se recoltează mai multe probe. Puneți proba într-un recipient steril de unică folosință cu capac filetat sau într-un recipient de transport cu un mediu pentru anaerobi sau într-un recipient (eprubetă) cu mediu tioglicolat închis cu un dop de cauciuc steril.

6.6. Teste pentru procesele infecțioase și inflamatorii ale sistemului genito-urinar

6.6.1. Probele de urină.

6.6.1.1. Reguli generale pentru colectarea probelor:

Nu este permisă colectarea urinei din lenjerie de pat sau dintr-o pungă de urină;

pentru a analiza urina în timpul urinării naturale, utilizați porția medie de dimineață;

înainte de colectarea probei, este necesar să se clătească bine organele genitale externe și zona anală cu apă caldă fiartă; În acest caz, trebuie acordată o atenție deosebită tratamentului deschiderii uretrei la bărbați (vestibulul vaginului la femei) pentru a se asigura că în timpul procedurii proba nu va fi contaminată suplimentar cu microbi;

Nu este permisă folosirea dezinfectanților pentru prelucrare, deoarece atunci când sunt introduse într-o probă, pot inhiba creșterea microorganismelor;

proba se transferă în laborator în cel mult 2 ore de la momentul recoltării;

Pentru a colecta și a livra probe la laborator, utilizați recipiente sterile de unică folosință cu capac cu filet sau eprubete (este posibil să folosiți tuburi de sticlă sterile, montate special, cu dop de celuloză permeabilă la gaz sau din tifon de bumbac, dar se acordă o atenție deosebită nu înmuierea dopului);

livrarea la laborator a probelor aspirate obținute prin tehnica puncției suprapubiene a vezicii urinare se efectuează într-un recipient de transport cu un mediu special pentru anaerobi sau într-o seringă închisă fără ac;

dacă se suspectează o infecție virală, probele sunt livrate la laborator într-un recipient steril de unică folosință pus pe gheață topită (gheața carbonică nu este permisă!);

orice procedură de obținere a unei probe folosind un cateter (în special la femei) se efectuează cu respectarea atentă a regulilor de asepsie pentru a preveni contaminarea suplimentară a pacientului în timpul introducerii cateterului;

Pentru cercetarea microbiologică nu este permisă utilizarea unei probe dintr-o probă zilnică.

6.6.1.2. Colectarea unei probe de urină de la femei în timpul urinării naturale.

Folosiți o porție medie, pentru că... prima trecere de urină ar trebui să îndepărteze orice comensal care poate fi prezent în uretră. Proba colectată în timpul următoarelor treceri trebuie să fie lipsită de contaminare. Fiabilitatea rezultatelor pozitive dintr-un astfel de material este de 80% la colectarea unei probe, 90% la colectarea a două probe consecutive și 100% la colectarea a trei probe dacă toate probele dau aceleași rezultate.

Lucrătorul medical care prelevează proba trebuie să își spele mâinile cu săpun, să se clătească cu apă și să se usuce. Dacă eșantionul este recoltat de către pacient însuși, i se explică în detaliu cum se face acest lucru, ținând cont de pregătirea prezentată mai sus și este avertizat despre ce se poate întâmpla dacă încalcă regulile:

ar trebui să clătiți bine deschiderea uretrei și zona vestibulului vaginului, precum și perineul și anusul cu apă cu săpun sau săpun lichid, clătiți cu apă caldă fiartă și uscați cu o cârpă sterilă de tifon;

orificiul vaginal trebuie închis cu un tampon de bumbac steril;

mențineți labiile exterioare la distanță unele de altele în timpul urinării;

scurgeți o cantitate mică de urină într-un recipient special pentru eliminare, în timp ce continuați să urinați;

Colectați o cantitate medie de urină (10-20 ml) într-un recipient special de unică folosință cu capac cu filet sau un recipient steril din sticlă instalat special în laborator.

6.6.1.3. Colectarea unei probe de urină de la bărbați în timpul urinării naturale.

La bărbați, o porție de urină este necesară pentru examinarea microbiologică, deoarece probabilitatea lor de contaminare este semnificativ mai mică decât cea a femeilor.

Persoana care prelevează proba trebuie să se spele pe mâini cu săpun, să se clătească cu apă și să se usuce. Dacă eșantioanele sunt colectate chiar de către pacient, ar trebui să li se explice în detaliu cum se face acest lucru, ținând cont de pregătirea prezentată mai jos și să fie avertizat despre ceea ce se poate întâmpla dacă regulile nu sunt respectate:
[email protected], ne vom da seama.

Efectuarea cercetărilor prin metoda PCR este permisă pe baza laboratoarelor existente, cu condiția ca laboratorul să aibă zone de lucru independente sau zone de lucru alocate ca parte a altor premise funcționale care corespund etapelor analizei PCR.

Laboratorul PCR trebuie să includă următorul set minim de zone de lucru:

• recepția, înregistrarea, analiza și prelucrarea inițială a materialului;
• Izolarea ADN/ARN;
• prepararea amestecurilor de reacție și efectuarea PCR;
• detectarea produselor de amplificare prin electroforeză sau Hyphae.

Este important de reținut că atunci când se utilizează metoda, nu este nevoie să se detecteze produsele de amplificare prin electroforeză. Prin urmare, nu este nevoie să alocați o zonă de lucru în laborator pentru electroforeză.

În laboratoarele PCR, este necesar să se prevadă și prezența spațiilor auxiliare: o arhivă (pentru documentele contabile), o cameră pentru personal, un birou de conducere, vestiare pentru angajați, săli de masă, săli sanitare (toaletă), încăperi de utilitate ( depozit).

În mod ideal, este necesar să existe o cameră de autoclave pentru dezinfectarea materialului de testat. Poate fi partajat cu alte departamente ale instituției, sub rezerva respectării cerințelor de siguranță biologică.

Premisele pentru efectuarea lucrărilor la etapele analizei PCR trebuie să fie în cutie (cutii cu pre-cutii). În zona de recepție, înregistrare, analiză și prelucrare primară a materialului efectuați recepția materialului, pregătirea probelor (sortare, etichetare, centrifugare etc.), depozitare și inactivare primară a reziduurilor de biomaterial cu dezinfectanți. Zona de recepție, înregistrare, analiză și prelucrare primară a materialului este situată în camera de recepție a materialelor sau într-o încăpere separată cu casete. Aici puteți, de asemenea, să primiți și să procesați probe pentru cercetare folosind alte metode (imunologie, de exemplu), cu condiția ca o stație de lucru separată să fie alocată pentru analiza PCR.

Zona de izolare ADN/ARN plasat într-o cameră separată. Atunci când se organizează un laborator PCR pe baza unui laborator existent, izolarea ADN/ARN este permisă în spațiile în care se desfășoară alte tipuri de cercetări, cu excepția lucrărilor de inginerie genetică. În acest caz, în încăpere este organizată o zonă de lucru pentru izolarea ADN/ARN, în care se află o cutie PCR sau cutie de siguranță biologică. Nu sunt permise alte tipuri de lucru în caseta PCR pentru izolarea ADN/ARN!

În zona pentru prepararea amestecurilor de reacție și efectuarea PCR se prepară un amestec de PCR, se adaugă preparate izolate de ADN/ARN sau ADNc într-un tub PCR, transcrierea inversă a ARN-ului și amplificarea ADN-ului sau ADNc. Camera pentru prepararea amestecurilor de reacție și efectuarea PCR trebuie să fie separată. Prepararea amestecurilor de reacție PCR se realizează într-o cutie PCR.

Dacă este necesar, etapa de izolare ADN/ARN poate fi combinată într-o cameră cu etapa de pregătire a amestecurilor de reacție și de efectuare a PCR dacă există casete PCR separate - pentru prepararea amestecurilor de reacție PCR și pentru izolarea ADN/ARN.

Zona de detectare a produselor de amplificare situat într-o cameră separată, dacă este posibil echipată cu o cutie PCR. Dacă este necesară utilizarea simultană a metodei de electroforeză și a metodei de analiză a hibridizării pentru a detecta produsele de amplificare, trebuie alocată o zonă de lucru separată în camera de detectare pentru analiza hibridizării. În acest caz, echipamentele și accesoriile pentru fiecare tip de detecție sunt marcate în raport cu fiecare zonă. Pipetele și articolele din sticlă destinate electroforezei nu sunt permise pentru analiza hibridizării.

Deciziile de planificare și amplasarea echipamentelor trebuie să asigure fluxul de mișcare a materialului studiat. Schimbul de aer între camera de detectare a produsului de amplificare și alte încăperi ar trebui eliminat complet.

Laboratorul PCR este dotat cu alimentare cu apă, canalizare, electricitate și încălzire. Toate încăperile laboratorului PCR sunt prevăzute cu suficientă iluminare naturală și artificială.

La construirea de laboratoare PCR noi sau la reconstrucția existente, sediul este echipat cu ventilație de alimentare și evacuare sau evacuare. Diferența de presiune a aerului din încăperile laboratorului PCR se realizează datorită diferențelor de rată de schimb a aerului din acestea. Cursul de schimb al aerului trebuie să corespundă valorilor date în tabel:

Dacă este necesar, în laboratorul PCR se poate instala aer condiționat.

Decorarea interioară a spațiilor se realizează în conformitate cu scopul lor funcțional. Suprafețele pereților, podelelor și tavanelor din spațiile de laborator trebuie să fie netede, fără fisuri, ușor de prelucrat și rezistente la detergenți și dezinfectanți. Podelele nu trebuie să fie alunecoase. Mobilierul de laborator trebuie să aibă un înveliș rezistent la detergenți și dezinfectanți. Suprafața meselor nu trebuie să aibă crăpături sau cusături. Spațiile de laborator trebuie să fie impenetrabile pentru rozătoare și insecte. Laboratorul PCR este dotat cu echipament de stingere a incendiilor.